| 英文缩略词 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一部分 强迫性游泳后大鼠杏仁体和海马结构内pCREB免疫阳性物质的表达 | 第14-40页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 材料和方法 | 第15-21页 |
| 1 实验对象 | 第15页 |
| 2 动物模型 | 第15页 |
| 3 实验分组 | 第15页 |
| 4 免疫细胞化学实验 | 第15-18页 |
| ·组织准备 | 第15-16页 |
| ·试剂 | 第16页 |
| ·酶免疫细胞化学单标法 | 第16-17页 |
| ·荧光免疫细胞双标法 | 第17页 |
| ·电镜的酶免疫细胞化学实验 | 第17-18页 |
| 5 蛋白免疫印迹 | 第18-21页 |
| ·裂解组织提取蛋白 | 第18页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第18-19页 |
| ·SDS-聚丙酰胺凝胶电泳 | 第19-21页 |
| 6.统计学处理 | 第21页 |
| 结果 | 第21-36页 |
| 1.AM和HF内pCREB免疫阳性细胞核 | 第21-29页 |
| ·正常组脑内pCREB免疫阳性细胞核 | 第21-24页 |
| ·AM | 第21-24页 |
| ·HF | 第24页 |
| ·大脑皮质 | 第24页 |
| ·FS后AM和AM等脑区pCREB免疫阳性物质表达上调 | 第24-29页 |
| ·AM | 第24-28页 |
| ·HF | 第28-29页 |
| ·大脑皮质 | 第29页 |
| 2.AM和HF神经元内pCREB免疫阳性物质与神经递质共表达 | 第29-34页 |
| ·Glu-免疫阳性神经元 | 第29页 |
| ·PV-免疫阳性神经元 | 第29-32页 |
| ·pCREB免疫阳性物质与Glu共存 | 第32-33页 |
| ·pCREB免疫阳性物质不与PV共存 | 第33-34页 |
| 3 免疫电镜 | 第34-36页 |
| ·pCREB免疫阳性细胞的超微结构 | 第34页 |
| ·pCREB和PV免疫双标的超微结构 | 第34-36页 |
| 讨论 | 第36-40页 |
| 第二部分 谷氨酸抑制剂对于大鼠FST行为的影响及pCREB表达的变化 | 第40-54页 |
| 前言 | 第40-41页 |
| 材料和方法 | 第41-46页 |
| 1 实验对象 | 第41页 |
| 2 动物模型 | 第41页 |
| 3 实验分组 | 第41-42页 |
| 4 免疫细胞化学实验 | 第42-43页 |
| ·组织准备 | 第42页 |
| ·酶免疫细胞化学实验 | 第42-43页 |
| 5 蛋白免疫印迹 | 第43-45页 |
| ·裂解组织提取蛋白 | 第43页 |
| ·蛋白浓度测定 | 第43页 |
| ·SDS-聚丙酰胺凝胶电泳 | 第43-45页 |
| 6 统计学分析 | 第45-46页 |
| 结果 | 第46-50页 |
| 1 谷氨酸抑制剂对大鼠FST的影响 | 第46页 |
| 2 谷氨酸抑制剂对HF和AM内pCREB水平的影响 | 第46-50页 |
| ·免疫细胞化学实验结果 | 第46-50页 |
| ·蛋白免疫印迹结果 | 第50页 |
| 讨论 | 第50-54页 |
| 小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 综述 | 第63-71页 |
| 在学期间发表论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 论文独创性声明 | 第73页 |
