| 内容提要 | 第1-3页 |
| 英文摘要 | 第3-5页 |
| 中文摘要 | 第5-9页 |
| 1． 前言 | 第9-28页 |
| 1．1 研究背景介绍 | 第9-14页 |
| 1．1．1 无脊推动物血淋巴的重要作用 | 第9-11页 |
| 1．1．2 无脊推动物血淋巴的抗逆机制 | 第11-13页 |
| 1．1．3 多肽类化合物的研究意义及研究方法 | 第13-14页 |
| 1．2 蛋白质组及其技术体系 | 第14-25页 |
| 1．2．1 蛋白质组学简介 | 第14-17页 |
| 1．2．2 蛋白质组研究的核心—用于分离的双向电泳 | 第17-19页 |
| 1．2．3 生物质谱技术 | 第19-23页 |
| 1．2．4 蛋白质组学研究中的生物信息学 | 第23-25页 |
| 1．3 缢蛏 | 第25-26页 |
| 1．4 本研究的目的及意义 | 第26-28页 |
| 2． 材料和方法 | 第28-34页 |
| 2．1 材料来源 | 第28页 |
| 2．2 主要试剂及设备型号 | 第28-29页 |
| 2．3 缓冲液及凝胶配制 | 第29-31页 |
| 2．4 实验方法 | 第31-34页 |
| 2．4．1 肌肉样品蛋白质提取液的制备 | 第31页 |
| 2．4．2 血淋巴样品制备 | 第31页 |
| 2．4．3 碱性蛋白提取 | 第31-32页 |
| 2．4．4 蛋白质浓度测定 | 第32页 |
| 2．4．5 食蛏泄肠吸虫的扫描电镜观察 | 第32页 |
| 2．4．6 双向电泳实验体系 | 第32-33页 |
| 2．4．7 质谱分析 | 第33页 |
| 2．4．8 数据库搜索 | 第33-34页 |
| 3． 实验内容与结果 | 第34-54页 |
| 3．1 小分子蛋白质双向电泳技术体系的初步建立 | 第34-36页 |
| 3．1．1 缢蛏闭壳肌肌肉组织2-DE技术体系的建立 | 第34-36页 |
| 3．1．2 对虾肌肉样品的比较结果 | 第36页 |
| 3．2 创伤处理后缢蛏斧足肌的蛋白质组比较研究 | 第36-38页 |
| 3．3 不同温度时间下缢蛏血淋巴的蛋白质组比较研究 | 第38-42页 |
| 3．3．1 实验温度的确定 | 第38页 |
| 3．3．2 实验时间的确定 | 第38-40页 |
| 3．3．3 36℃，0．5h高温处理下缢蛏血淋巴差异蛋白的分析鉴定 | 第40-42页 |
| 3．4 低盐度下缢蛏血淋巴的蛋白质组比较研究 | 第42-45页 |
| 3．5 高温、低盐压力下缢蛏血淋巴碱性蛋白的蛋白质组比较研究 | 第45-49页 |
| 3．6 寄生压力下缢蛏血淋巴的蛋白质组比较研究 | 第49-54页 |
| 4． 讨论 | 第54-66页 |
| 4．1 缢蛏肌肉样品双向电泳技术 | 第54-57页 |
| 4．1．1 样品制备 | 第54-55页 |
| 4．1．2 电泳体系 | 第55-56页 |
| 4．1．3 固定、染色、脱色方法 | 第56页 |
| 4．1．4 问题及展望 | 第56-57页 |
| 4．2 血淋巴抗逆性分析 | 第57-64页 |
| 4．2．1 小分子多肽的变动情况及其功能 | 第57-61页 |
| 4．2．2 高温、低盐短期处理后血淋巴的抗性变动 | 第61-63页 |
| 4．2．3 自然寄生压力下血淋巴的抗性变动 | 第63-64页 |
| 4．3 蛋白质组学技术用于本研究的优越性 | 第64-66页 |
| 5． 实验小节 | 第66-67页 |
| 6． 参考文献 | 第67-77页 |
