| 中文摘要 | 第1-9页 |
| 英文摘要 | 第9-10页 |
| 1 引言 | 第10-19页 |
| ·猪传染性胃肠炎病原学研究进展 | 第10-14页 |
| ·TGEV形态及培养特性 | 第10页 |
| ·TGEV理化学特性 | 第10-11页 |
| ·TGEV抗原性、变异性 | 第11页 |
| ·TGEV分子生物学研究进展 | 第11-14页 |
| ·猪传染性胃肠炎流行病学 | 第14页 |
| ·TGE诊断研究进展 | 第14-17页 |
| ·I病毒分离 | 第15页 |
| ·核酸检测的方法 | 第15页 |
| ·免疫学检测方法 | 第15-17页 |
| ·本课题研究的目的与意义 | 第17-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-28页 |
| ·实验材料 | 第19-20页 |
| ·病毒 | 第19页 |
| ·质粒和菌株 | 第19页 |
| ·重组TGEVN蛋白纯化所需试剂 | 第19页 |
| ·Dot-ELISA和间接ELISA检测所需试剂 | 第19-20页 |
| ·重组TGEVN蛋白单克隆抗体制备所需材料 | 第20页 |
| ·主要仪器 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-28页 |
| ·诊断抗原的制备 | 第20-21页 |
| ·纯化重组TGEVN蛋白免疫活性检测 | 第21-22页 |
| ·Dot-ELISA检测TGEV抗体方法的研究 | 第22-23页 |
| ·间接ELISA检测TGEV抗体方法的研究 | 第23-24页 |
| ·诊断抗体(McAb)的制备 | 第24-26页 |
| ·McAb免疫活性检测 | 第26-27页 |
| ·肠内容物中TGEV裂解处理方法的优化 | 第27-28页 |
| 3 实验结果 | 第28-38页 |
| ·诊断抗原的制备 | 第28-30页 |
| ·重组TGEVN蛋白的纯化结果 | 第28页 |
| ·洗脱液的SDS-PAGE分析结果 | 第28-29页 |
| ·Bradford法测定纯化重组TGEVN蛋白含量 | 第29-30页 |
| ·纯化重组TGEVN蛋白的免疫活性检测 | 第30-31页 |
| ·SDS-PAGE分析纯化的重组TGEVN蛋白 | 第30页 |
| ·Western-Blot分析纯化的重组TGEVN蛋白 | 第30-31页 |
| ·Dot-ELISA检测TGEV抗体方法的研究 | 第31-32页 |
| ·重组TGEVN蛋白包被最适浓度的确定 | 第31页 |
| ·封闭剂的选择 | 第31页 |
| ·纯化空载体表达的蛋白质作为抗原检测结果 | 第31页 |
| ·同其它肠道病毒特异性试验 | 第31-32页 |
| ·抗原预点膜保存期测定 | 第32页 |
| ·间接ELISA检测TGEV抗体最佳工作条件的确定 | 第32-34页 |
| ·最佳抗原工作浓度的确定 | 第32-33页 |
| ·脱脂奶粉浓度的确定 | 第33-34页 |
| ·抗原与待检血清最适作用时间的确定 | 第34页 |
| ·底物液最佳作用时间的确定 | 第34页 |
| ·诊断抗体(McAb)的制备 | 第34-35页 |
| ·细胞融合及筛选结果 | 第34页 |
| ·间接ELISA测腹水效价 | 第34页 |
| ·杂交瘤细胞染色体计数 | 第34-35页 |
| ·McAb免疫活性检测 | 第35-36页 |
| ·全病毒抗原Western-Blot检测McAb的结果 | 第35-36页 |
| ·全病毒抗原间接ELISA检测McAb的结果 | 第36页 |
| ·肠内容物中TGEV裂解处理结果 | 第36-38页 |
| 4 讨论 | 第38-42页 |
| ·诊断抗原的制备 | 第38-39页 |
| ·检测抗体方法的研究 | 第39页 |
| ·诊断抗体(McAb)的研究 | 第39-40页 |
| ·肠内容物中TGEV裂解处理方法的优化 | 第40-41页 |
| ·TGEV与PRCV鉴别诊断的初步探讨 | 第41-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-50页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51页 |
