| 缩略语 | 第1-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 第1章 文献综述 | 第10-20页 |
| ·红曲菌及其次级代谢产物 | 第10-12页 |
| ·红曲菌 | 第10页 |
| ·红曲菌的次级代谢产物 | 第10-12页 |
| ·选育不产桔霉素红曲菌的研究进展 | 第12-13页 |
| ·自然筛选和诱变育种 | 第12页 |
| ·构建基因工程菌 | 第12-13页 |
| ·基因敲除 | 第13-14页 |
| ·蛋白质组学研究的核心技术 | 第14-17页 |
| ·蛋白质分离技术 | 第14-15页 |
| ·蛋白质鉴定技术 | 第15-17页 |
| ·蛋白质数据库 | 第17页 |
| ·真核微生物蛋白质组学研究进展 | 第17-19页 |
| ·酵母蛋白质组学 | 第17-18页 |
| ·秀丽线虫蛋白质组学 | 第18页 |
| ·疟原虫蛋白质组学 | 第18-19页 |
| ·本研究的目的、意义 | 第19-20页 |
| 第2章 红曲菌M22pksCT基因缺失株的构建 | 第20-31页 |
| ·材料 | 第20-23页 |
| ·菌种和质粒 | 第20-21页 |
| ·主要仪器和设备 | 第21页 |
| ·主要试剂 | 第21-23页 |
| ·实验方法 | 第23-26页 |
| ·打靶载体的转化与扩增 | 第23-24页 |
| ·打靶载体的转化 | 第24-25页 |
| ·转化子的筛选和PCR鉴定 | 第25-26页 |
| ·桔霉素产量的分析—HPLC法 | 第26页 |
| ·实验结果 | 第26-29页 |
| ·红曲菌基因组DNA的提取 | 第26-27页 |
| ·阳性转化子同源重组的PCR验证 | 第27页 |
| ·基因缺失株和原始菌株桔霉素产量的HPLC分析 | 第27-29页 |
| ·讨论 | 第29-30页 |
| ·本章小结 | 第30-31页 |
| ·主要研究结论 | 第30页 |
| ·研究展望 | 第30-31页 |
| 第3章 红色红曲菌双向电泳体系的建立 | 第31-44页 |
| ·材料 | 第31-33页 |
| ·菌种 | 第31页 |
| ·主要仪器和设备 | 第31页 |
| ·主要试剂 | 第31-33页 |
| ·实验方法 | 第33-36页 |
| ·红色红曲菌全蛋白的提取—TCA-丙酮法 | 第33-34页 |
| ·蛋白质样品的定量—吸光法 | 第34页 |
| ·培养基对双向电泳结果影响的研究 | 第34-35页 |
| ·蛋白质裂解液对双向电泳影响的研究 | 第35页 |
| ·水化上样条件对双向电泳结果影响的研究 | 第35-36页 |
| ·实验结果 | 第36-39页 |
| ·红色红曲菌Mr11全蛋白样品的定量 | 第36-37页 |
| ·培养基对双向电泳结果影响的研究 | 第37页 |
| ·蛋白质裂解液对双向电泳结果影响的研究 | 第37-38页 |
| ·水化条件对双向电泳结果影响的研究 | 第38-39页 |
| ·讨论 | 第39-42页 |
| ·蛋白质提取方法的确定 | 第39-40页 |
| ·影响双向电泳结果的因素 | 第40-42页 |
| ·染色方法的选择 | 第42页 |
| ·本章小结 | 第42-44页 |
| ·主要研究结论 | 第42-43页 |
| ·研究展望 | 第43-44页 |
| 第4章 红色红曲菌pksCT基因缺失株蛋白质双向电泳分析 | 第44-52页 |
| ·材料 | 第44-46页 |
| ·菌种 | 第44页 |
| ·主要仪器和设备 | 第44页 |
| ·主要试剂 | 第44-46页 |
| ·实验方法 | 第46-48页 |
| ·红曲菌总蛋白的提取—TCA-丙酮法 | 第46-47页 |
| ·原始菌株和pksCT基因缺失株的差异蛋白分析—双向凝胶电泳 | 第47-48页 |
| ·实验结果 | 第48-50页 |
| ·讨论 | 第50页 |
| ·本章小结 | 第50-52页 |
| ·主要研究结论 | 第50-51页 |
| ·研究展望 | 第51-52页 |
| 致谢 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-56页 |
| 附录 | 第56-57页 |
| 个人简介 | 第57页 |