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氧化低密度脂蛋白激活树突状细胞参与动脉粥样硬化作用机制的蛋白组学研究

致谢第1-6页
前言第6-12页
 参考文献第9-12页
中文摘要第12-15页
Abstract第15-18页
中英文缩略语表第18-20页
目次第20-24页
第一部分:树突状细胞(DCS)的培养和氧化低密度脂蛋白(OX-LDL)对小鼠骨髓来源DCS成熟及其免疫功能的影响第24-44页
 1 材料与设备第24-26页
   ·、主要实验器材第24-25页
   ·、主要实验试剂第25页
   ·、实验动物第25-26页
 2 实验方法第26-30页
   ·、小鼠骨髓DCs的体外培养第26-27页
   ·、DCs的形态学观察第27页
   ·、DCs的流式细胞分析仪纯度鉴定第27页
   ·、台盼蓝染色检测细胞活力第27-28页
   ·、ox-LDL的制备第28页
   ·、T淋巴细胞的分离第28-29页
   ·、ox-LDL对DCs的干预第29页
   ·、DCs分泌细胞因子的检测第29页
   ·、混合淋巴细胞反应(MLR)第29-30页
   ·、统计学分析第30页
 3 实验结果第30-37页
   ·、C57BL/6小鼠骨髓DCs的培养与形态学观察第30-31页
   ·、DCs的流式细胞分析仪纯度鉴定第31-32页
   ·、细胞活力检测第32页
   ·、DCs应用ox-LDL干预24 H后形态变化第32-33页
   ·、ox-LDL促进DCs分泌TNF-A第33-34页
   ·、ox-LDL促进DCs分泌IL-12第34-36页
   ·、ox-LDL干预对DCs刺激T淋巴细胞增殖的影响第36-37页
 4 讨论部分第37-39页
 5 参考文献第39-44页
第二部分:氧化低密度脂蛋白(OX-LDL)干预树突状细胞(DCS)的ITRAQ研究第44-79页
 1 材料与设备第44-47页
   ·、主要实验器材第44-45页
   ·、主要实验试剂第45-46页
   ·、实验动物第46-47页
 2 实验方法第47-53页
   ·、小鼠骨髓DCs的体外培养第47-48页
   ·、ox-LDL的制备第48页
   ·、ox-LDL对DCs的干预第48页
   ·、DCs表面分子的流式细胞术(FACS)检测第48-49页
   ·、DC分泌细胞因子的检测第49页
   ·、ITRAQ蛋白样品制备第49页
   ·、ITRAQ具体操作步骤第49-51页
   ·、免疫印迹(WESTERN BLOTTING ANALYSIS)验证部分差异蛋白的表达第51-53页
   ·、统计学分析第53页
 3 实验结果第53-67页
   ·、流式细胞术检测ox-LDL对DCs表面标志表达的影响第53-55页
   ·、ox-LDL促进DCs分泌TNF-A和IL-12第55页
   ·、蛋白质谱鉴定及表达差异分析第55-61页
   ·、蛋白功能聚类分析第61-64页
   ·、WESTERN BLOT验证部分表达上调的蛋白表达第64-67页
 4 讨论部分第67-73页
 5 参考文献第73-79页
第三部分 APOE-/-小鼠动脉粥样硬化斑块内树突状细胞及组织蛋白酶S的表达第79-98页
 1 材料与设备第79-81页
   ·、主要实验器材第79-80页
   ·、主要实验试剂第80-81页
   ·、实验动物第81页
 2 实验方案第81-84页
   ·、实验动物分组第81-82页
   ·、APOE-/-的小鼠动脉粥样硬化模型的建立第82页
   ·、小鼠血脂水平检测第82页
   ·、主动脉血管标本收集第82页
   ·、主动脉病变的形态学观察第82-83页
   ·、DCs和组织蛋白酶S在APOE-/-小鼠AS病变中的分布及表达第83-84页
   ·、统计分析第84页
 3 实验结果第84-90页
   ·、血脂分析检测结果第84-86页
   ·、实验小鼠主动脉解剖示意图第86-87页
   ·、主动脉根部血管动脉粥样硬化斑块的大小第87-89页
   ·、APOE-\-小鼠主动脉动脉粥样硬化斑块中S100蛋白表达第89页
   ·、APOE-\-小鼠主动脉动脉粥样硬化斑块中组织蛋白酶S的表达第89-90页
 4 讨论部分第90-94页
 5 参考文献第94-98页
实验结论第98-100页
综述第100-115页
 参考文献第105-115页
作者简历及在学期间所取得的科研成果第115页

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