| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-20页 |
| 第一节 微生物和矿物的相互作用 | 第10-12页 |
| 1 微生物对矿物的风化效应 | 第10-11页 |
| 2 微生物对矿物形成的影响 | 第11-12页 |
| 第二节 微生物参与矿物风化的作用机理研究 | 第12-14页 |
| 1 有机酸的作用 | 第12-13页 |
| 2 胞外多糖的作用 | 第13页 |
| 3 氧化还原作用 | 第13-14页 |
| 第三节 微生物多糖对矿物风化的作用机理研究 | 第14-18页 |
| 1 微生物胞外多糖的概述 | 第14-16页 |
| ·多糖的定义 | 第14页 |
| ·多糖的分类 | 第14页 |
| ·多糖的生物学功能 | 第14-15页 |
| ·主要的产多糖的微生物 | 第15-16页 |
| 2 微生物多糖参与矿物风化的作用机理研究 | 第16-18页 |
| 第四节 研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 第二章 产多糖根瘤菌Q32对硅酸盐矿物的风化作用 | 第20-48页 |
| 1 材料 | 第20页 |
| ·菌株 | 第20页 |
| ·试验材料 | 第20页 |
| ·培养基 | 第20页 |
| 2 方法 | 第20-22页 |
| ·菌株形态学特征 | 第20-21页 |
| ·菌落形态的观察 | 第20-21页 |
| ·单细胞形态观察 | 第21页 |
| ·供试矿物分析 | 第21页 |
| ·菌株Q32对不同硅酸盐矿物的溶解试验 | 第21页 |
| ·菌种活化和种子液的制备 | 第21页 |
| ·菌株Q32对不同硅酸盐矿物的溶解试验 | 第21页 |
| ·测定方法 | 第21-22页 |
| 3 结果与分析 | 第22-45页 |
| ·菌株的形态学特征 | 第22-23页 |
| ·矿物材料分析 | 第23-24页 |
| ·矿物元素组成 | 第23-24页 |
| ·矿物组分分析 | 第24页 |
| ·菌株Q32对不同硅酸盐矿物的溶解试验 | 第24-45页 |
| ·细菌数量的动态变化 | 第24-25页 |
| ·发酵液pH和有机酸含量的动态变化 | 第25-27页 |
| ·发酵液中多糖含量的动态变化 | 第27页 |
| ·矿物表面金属离子的浸出结果 | 第27-33页 |
| ·矿物形貌观察与矿物表面元素测定 | 第33-45页 |
| 4 讨论 | 第45-46页 |
| 5 本章小节 | 第46-48页 |
| 第三章 根瘤菌Q32胞外多糖的提取纯化和结构分析 | 第48-68页 |
| 1 试验方法 | 第48-50页 |
| ·胞外多糖的提取工艺 | 第48页 |
| ·脱蛋白 | 第48页 |
| ·多糖的纤维素柱层析纯化 | 第48-49页 |
| ·紫外扫描分析 | 第49页 |
| ·红外光谱(FI-IR)分析 | 第49页 |
| ·糖醛酸含量的测定 | 第49页 |
| ·单糖组成分析 | 第49-50页 |
| ·样品的水解 | 第49页 |
| ·标准单糖的衍生化 | 第49-50页 |
| ·衍生物的制备 | 第50页 |
| ·气相色谱的条件 | 第50页 |
| ·多糖中吸附有机酸含量的测定 | 第50页 |
| 2 结果分析 | 第50-64页 |
| ·多糖柱层析的洗脱曲线 | 第50-51页 |
| ·多糖的光谱分析 | 第51-54页 |
| ·糖醛酸含量的测定 | 第54-55页 |
| ·不同条件所产多糖的单糖组成分析 | 第55-63页 |
| ·多糖中所含有机酸的检测 | 第63-64页 |
| 3 讨论 | 第64-65页 |
| 4 本章小结 | 第65-68页 |
| 第四章 根瘤菌Q32胞外多糖对硅酸盐矿物的浸溶作用 | 第68-72页 |
| 1 材料 | 第68页 |
| ·菌株 | 第68页 |
| ·试验材料 | 第68页 |
| ·培养基 | 第68页 |
| 2 方法 | 第68-69页 |
| ·胞外多糖的提取和纯化 | 第68页 |
| ·胞外多糖对硅酸盐矿物的浸溶作用 | 第68-69页 |
| 3 结果与分析 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70-71页 |
| 5 本章小节 | 第71-72页 |
| 全文总结 | 第72-74页 |
| 本文的创新点 | 第74-76页 |
| 附录1 | 第76-77页 |
| 附录2 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-86页 |
| 致谢 | 第86页 |