| 摘要 | 第9-11页 |
| 英文摘要 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 神经胶质瘤 | 第13页 |
| 1.1.1 神经胶质瘤的简介 | 第13页 |
| 1.1.2 神经胶质瘤的治疗 | 第13页 |
| 1.2 大环内酯类药物的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.2.1 药理作用 | 第14页 |
| 1.2.2 治疗作用 | 第14-15页 |
| 1.2.3 伊维菌素的发现及应用 | 第15-16页 |
| 1.2.4 莫西克汀的发现及应用 | 第16-17页 |
| 1.3 抗肿瘤药物诱导细胞凋亡的分子机制 | 第17-19页 |
| 1.3.1 诱导细胞分化 | 第17-18页 |
| 1.3.2 促进细胞凋亡 | 第18页 |
| 1.3.3 信号传导通路 | 第18-19页 |
| 1.4 本课题的研究内容 | 第19-20页 |
| 1.5 本课题的研究目的与意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-37页 |
| 2.1 材料 | 第21-24页 |
| 2.1.1 细胞及裸鼠 | 第21页 |
| 2.1.2 主要仪器设备 | 第21-22页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要试剂配制方法 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-37页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.2 体外增殖实验 | 第25-26页 |
| 2.2.3 细胞周期分析 | 第26页 |
| 2.2.4 细胞凋亡检测 | 第26-27页 |
| 2.2.5 透射电镜观察 | 第27页 |
| 2.2.6 caspase活性检测 | 第27-29页 |
| 2.2.7 Western blotting实验 | 第29-30页 |
| 2.2.8 RT-PCR实验 | 第30-33页 |
| 2.2.9 体内增殖实验 | 第33-35页 |
| 2.2.10 统计分析方法 | 第35-37页 |
| 3 结果分析 | 第37-56页 |
| 3.1 伊维菌素、莫西克汀在体外抑制胶质瘤细胞的増殖 | 第37-40页 |
| 3.2 伊维菌素、莫西克汀体外诱导细胞G0/G1周期阻滞 | 第40-42页 |
| 3.3 伊维菌素、莫西克汀体外诱导细胞凋亡 | 第42-44页 |
| 3.4 伊维菌素、莫西克汀诱导细胞超微结构形态学变化 | 第44-45页 |
| 3.5 伊维菌素、莫西克汀对相关周期蛋白表达量的影响 | 第45-49页 |
| 3.5.1 相关周期蛋白的表达 | 第45-47页 |
| 3.5.2 线粒体相关凋亡蛋白的表达 | 第47-49页 |
| 3.6 相关凋亡基因的表达结果 | 第49-52页 |
| 3.7 caspase活性检测 | 第52页 |
| 3.8 伊维菌素、莫西克汀对胶质瘤细胞荷瘤模型的影响 | 第52-56页 |
| 3.8.1 HE染色 | 第53-54页 |
| 3.8.2 TUNEL染色 | 第54页 |
| 3.8.3 免疫组织化学染色 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-60页 |
| 4.1 伊维菌素、莫西克汀对胶质瘤细胞增殖的抑制作用 | 第56-57页 |
| 4.2 伊维菌素、莫西克汀诱导胶质瘤细胞凋亡的分子机制 | 第57-58页 |
| 4.3 伊维菌素、莫西克汀诱导胶质瘤细胞周期阻滞的分子机制 | 第58页 |
| 4.4 伊维菌素和莫西克汀对荷神经胶质瘤模型的体内研究 | 第58-60页 |
| 5 结论 | 第60-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第69页 |
