| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第10-24页 |
| 1.1 结肠癌 | 第10-11页 |
| 1.2 细胞凋亡 | 第11-14页 |
| 1.2.1 概念 | 第11页 |
| 1.2.2 分类及发生途径 | 第11-13页 |
| 1.2.3 细胞凋亡与肿瘤 | 第13-14页 |
| 1.3 细胞自噬 | 第14-19页 |
| 1.3.1 概念与类别 | 第14-15页 |
| 1.3.2 自噬的发生机制 | 第15-17页 |
| 1.3.3 细胞自噬与肿瘤 | 第17-19页 |
| 1.4 喹啉 | 第19-23页 |
| 1.4.1 喹啉的简介 | 第19页 |
| 1.4.2 喹啉类衍生物 | 第19-23页 |
| 1.5 研究出发点 | 第23-24页 |
| 2 实验材料与方法 | 第24-38页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-28页 |
| 2.1.1 细胞系 | 第24页 |
| 2.1.2 实验动物 | 第24页 |
| 2.1.3 药品与试剂 | 第24-25页 |
| 2.1.4 抗体 | 第25-26页 |
| 2.1.5 质粒 | 第26页 |
| 2.1.6 主要实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.7 主要试剂的配制 | 第27页 |
| 2.1.8 生物学软件 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-38页 |
| 2.2.1 细胞操作 | 第28-30页 |
| 2.2.2 Western Blot蛋白免疫印迹实验 | 第30-33页 |
| 2.2.3 CCK-8法细胞活力检测 | 第33页 |
| 2.2.4 平板克隆形成 | 第33-34页 |
| 2.2.5 Annexin V/FITC双染法检测细胞凋亡 | 第34页 |
| 2.2.6 细胞自噬检测 | 第34-36页 |
| 2.2.7 小鼠实验方案 | 第36-37页 |
| 2.2.8 统计学分析 | 第37-38页 |
| 3 实验结果 | 第38-55页 |
| 3.1 喹啉衍生化合物的筛选结果 | 第38-40页 |
| 3.2 RQ-43的化学结构 | 第40页 |
| 3.3 RQ-43诱导结肠癌细胞程序性死亡 | 第40-47页 |
| 3.3.1 RQ-43对结肠癌细胞的杀伤作用 | 第40-42页 |
| 3.3.2 RQ-43诱导结肠癌细胞凋亡不依赖Caspase途径 | 第42-45页 |
| 3.3.3 RQ-43对细胞凋亡调控分子的影响 | 第45页 |
| 3.3.4 RQ-43通过激活JNK诱导细胞凋亡 | 第45-47页 |
| 3.4 RQ-43诱导结肠癌细胞发生自噬 | 第47-51页 |
| 3.4.1 RQ-43对自噬标志蛋白LC3的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.2 RQ-43诱导自噬潮发生 | 第48-50页 |
| 3.4.3 RQ-43不通过激活JNK诱导细胞自噬 | 第50-51页 |
| 3.5 RQ-43通过影响ATG5通路诱导细胞自噬 | 第51-52页 |
| 3.5.1 RQ-43对自噬相关分子的影响 | 第51页 |
| 3.5.2 ATG5的敲除能够拯救RQ-43诱导细胞杀伤 | 第51-52页 |
| 3.6 RQ-43对动物及其体内肿瘤生长的影响 | 第52-55页 |
| 3.6.1 RQ-43在体内对动物急毒性较低 | 第52-53页 |
| 3.6.2 RQ-43抑制动物体内肿瘤的生长 | 第53-55页 |
| 4 讨论 | 第55-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
