| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第10-30页 |
| 1.1 课题研究背景 | 第10页 |
| 1.2 生物活性肽概述 | 第10-15页 |
| 1.2.1 生物活性肽的基本定义 | 第10页 |
| 1.2.2 生物活性肽的分类 | 第10-11页 |
| 1.2.3 生物活性肽的制备方法 | 第11-13页 |
| 1.2.3.1 酶解法 | 第11-12页 |
| 1.2.3.2 微生物发酵法 | 第12页 |
| 1.2.3.3 化学合成法 | 第12页 |
| 1.2.3.4 化学水解法 | 第12-13页 |
| 1.2.3.5 生物提取法 | 第13页 |
| 1.2.3.6 基因重组法 | 第13页 |
| 1.2.4 生物活性肽功能预测 | 第13-14页 |
| 1.2.5 生物活性肽的研究进展 | 第14-15页 |
| 1.3 IBD概述 | 第15-24页 |
| 1.3.1 炎症的基本定义 | 第15页 |
| 1.3.2 IBD定义 | 第15-16页 |
| 1.3.3 IBD临床表现 | 第16页 |
| 1.3.4 IBD病因及发病机制 | 第16-18页 |
| 1.3.4.1 遗传因素 | 第16-17页 |
| 1.3.4.2 环境因素 | 第17页 |
| 1.3.4.3 肠道微生物 | 第17页 |
| 1.3.4.4 其他因素 | 第17-18页 |
| 1.3.5 IBD病理学基础 | 第18-19页 |
| 1.3.5.1 肠道组织结构 | 第18页 |
| 1.3.5.2 肠道炎症病理学观察 | 第18-19页 |
| 1.3.6 与IBD相关的基因 | 第19-23页 |
| 1.3.6.1 IL-6与IBD | 第19页 |
| 1.3.6.2 IL-17与IBD | 第19-20页 |
| 1.3.6.3 TNF-α与IBD | 第20页 |
| 1.3.6.4 IL-10与IBD | 第20页 |
| 1.3.6.5 G蛋白偶联受体与IBD | 第20-21页 |
| 1.3.6.6 KI-67与IBD | 第21页 |
| 1.3.6.7 TFF3与IBD | 第21-22页 |
| 1.3.6.8 趋化因子和趋化因子受体与IBD | 第22页 |
| 1.3.6.9 紧密连接蛋白与IBD | 第22页 |
| 1.3.6.10 TLRs与IBD | 第22-23页 |
| 1.3.7 炎症性肠病的治疗方法 | 第23页 |
| 1.3.8 常用的炎症性肠病动物模型 | 第23-24页 |
| 1.3.8.1 DSS诱导模型 | 第23-24页 |
| 1.3.8.2 TNBS诱导模型 | 第24页 |
| 1.4 瘙痒研究概述 | 第24-27页 |
| 1.4.1 瘙痒的基本定义 | 第24页 |
| 1.4.2 瘙痒的传导机制 | 第24-25页 |
| 1.4.3 瘙痒动物模型 | 第25-26页 |
| 1.4.3.1 常用的瘙痒模型动物 | 第25-26页 |
| 1.4.3.2 瘙痒动物模型的建立方法 | 第26页 |
| 1.4.4 常用的止痒药物 | 第26-27页 |
| 1.5 本课题研究目的意义、主要研究内容和创新之处 | 第27-30页 |
| 1.5.1 本课题研究的目的意义 | 第27-28页 |
| 1.5.2 本课题研究的主要内容 | 第28页 |
| 1.5.3 本课题创新之处 | 第28-30页 |
| 第二章 材料与方法 | 第30-43页 |
| 2.1 实验仪器设备 | 第30-31页 |
| 2.2 实验材料及试剂 | 第31-33页 |
| 2.2.1 实验材料及动物 | 第31页 |
| 2.2.1.1 生物活性肽 | 第31页 |
| 2.2.1.2 实验动物 | 第31页 |
| 2.2.2 实验试剂及药品 | 第31-32页 |
| 2.2.3 实验所需试剂的配制 | 第32-33页 |
| 2.2.3.1 C57BL/6小鼠体内抗炎实验所需溶液配制 | 第32-33页 |
| 2.2.3.2 止痒实验所需溶液配制 | 第33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-41页 |
| 2.3.1 DSS结肠炎症模型的建立方法及分组 | 第33-34页 |
| 2.3.1.1 DSS结肠炎症模型的建立 | 第33页 |
| 2.3.1.2 实验分组及给药 | 第33-34页 |
| 2.3.2 DSS模型鼠的症状观察及临床打分 | 第34-35页 |
| 2.3.3 实验样品的获取及处理方法 | 第35-36页 |
| 2.3.3.1 小鼠肠道黏膜刮取方法 | 第35页 |
| 2.3.3.2 小鼠肠道固定方法 | 第35-36页 |
| 2.3.3.3 石蜡切片及HE染色方法 | 第36页 |
| 2.3.4 逆转录聚合酶链反应(RT-PCR) | 第36-39页 |
| 2.3.4.1 小鼠结肠黏膜总RNA的提取 | 第36-37页 |
| 2.3.4.2 cDNA的合成 | 第37页 |
| 2.3.4.3 实时荧光定量PCR | 第37-39页 |
| 2.3.5 止痒实验方法 | 第39-41页 |
| 2.3.5.1 小鼠皮肤瘙痒模型建立 | 第39页 |
| 2.3.5.2 分组及给药方法 | 第39-40页 |
| 2.3.5.3 舔体反应观察统计方法 | 第40页 |
| 2.3.5.4 止痒功效人体皮肤感官评价方法 | 第40页 |
| 2.3.5.5 双盲实验方法 | 第40-41页 |
| 2.4 统计方法 | 第41-42页 |
| 2.5 实验流程 | 第42-43页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第43-72页 |
| 3.1 生物活性肽对结肠炎小鼠的功效研究结果 | 第43-60页 |
| 3.1.1 结肠炎小鼠总体状况 | 第43页 |
| 3.1.2 生物活性肽对结肠炎小鼠体重的影响 | 第43-48页 |
| 3.1.2.1 腹腔注射活性肽对结肠炎小鼠体重的影响 | 第43-45页 |
| 3.1.2.2 灌胃法给药活性肽对结肠炎小鼠体重的影响 | 第45-46页 |
| 3.1.2.3 两种给药方法对小鼠体重影响相互比较 | 第46-48页 |
| 3.1.3 生物活性肽对结肠炎小鼠临床得分的影响 | 第48-52页 |
| 3.1.3.1 腹腔注射活性肽对结肠炎小鼠临床得分的影响 | 第48-49页 |
| 3.1.3.2 灌胃法给药活性肽对结肠炎小鼠临床得分的影响 | 第49-50页 |
| 3.1.3.3 两种给药方法对小鼠临床得分影响相互比较 | 第50-52页 |
| 3.1.4 生物活性肽对结肠炎小鼠肠道长度的影响 | 第52-56页 |
| 3.1.4.1 腹腔注射活性肽对结肠炎小鼠肠道长度的影响 | 第52-53页 |
| 3.1.4.2 灌胃法给予活性肽对结肠炎小鼠肠道长度的影响 | 第53-55页 |
| 3.1.4.3 两种给药方法对小鼠肠道长度影响相互比较 | 第55-56页 |
| 3.1.5 生物活性肽对结肠炎小鼠肠道组织的影响 | 第56-60页 |
| 3.1.5.1 腹腔注射活性肽对结肠炎小鼠肠道组织的影响 | 第56-58页 |
| 3.1.5.2 灌胃法给予活性肽对结肠炎小鼠肠道组织的影响 | 第58-60页 |
| 3.2 生物活性肽抗炎作用分子机制研究结果 | 第60-69页 |
| 3.2.1 腹腔注射给予活性肽对16种基因表达量的影响 | 第61-64页 |
| 3.2.1.1 小鼠体重下降期各基因相对表达量的变化 | 第61-62页 |
| 3.2.1.2 小鼠体重最低点各基因相对表达量的变化 | 第62-63页 |
| 3.2.1.3 小鼠体重恢复期各基因相对表达量的变化 | 第63-64页 |
| 3.2.2 灌胃法给予活性肽对16种基因表达量的影响 | 第64-69页 |
| 3.2.2.1 小鼠体重下降期各基因相对表达量的变化 | 第64-66页 |
| 3.2.2.2 小鼠体重最低点各基因相对表达量的变化 | 第66-67页 |
| 3.2.2.3 小鼠体重恢复期各基因相对表达量的变化 | 第67-69页 |
| 3.3 生物活性肽其他功能初探 | 第69-72页 |
| 3.3.1 生物活性肽Y7止痒作用动物模型实验结果 | 第69-70页 |
| 3.3.2 生物活性肽Y7止痒作用人体感官评价 | 第70页 |
| 3.3.3 生物活性肽Y7止痒作用双盲实验 | 第70-72页 |
| 主要结论与展望 | 第72-75页 |
| 结论 | 第72-73页 |
| 展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历 | 第84-85页 |
| 研究成果 | 第85页 |
