首页--农业科学论文--畜牧、动物医学、狩猎、蚕、蜂论文--动物医学(兽医学)论文--兽医基础科学论文--家畜免疫学论文

抗流感基因的筛选与功能验证和HSP27负调控干扰素通路研究

摘要第10-12页
Abstract第12-14页
缩略语表第15-17页
第1章 文献综述第17-44页
    1 猪流感第17-21页
        1.1 北美猪流感病毒第19页
        1.2 欧亚猪流感病毒第19-20页
        1.3 甲型H1N1猪流感病毒第20页
        1.4 猪与禽流感病毒第20-21页
    2 高通量筛选病毒感染相关宿主基因技术第21-23页
        2.1 蛋白互作技术第21-22页
        2.2 基因组学第22页
        2.3 蛋白质组学第22-23页
        2.4 RNAi第23页
    3 天然免疫系统第23-31页
        3.1 模式识别受体第24-25页
        3.2 TLRs第25-26页
        3.3 RLRs第26-27页
        3.4 干扰素第27-28页
        3.5 JAK-STAT通路第28-29页
        3.6 干扰素诱导基因第29-31页
    4 流感病毒诱导的信号通路第31-33页
    5 干扰素负调控机制第33-37页
        5.1 降解主要的接头分子第33-34页
        5.2 对接头分子进行蛋白修饰第34-35页
        5.3 阻断接头分子的互作第35-36页
        5.4 流感病毒拮抗干扰素通路的策略第36-37页
            5.4.1 通过病毒蛋白拮抗干扰素第36-37页
            5.4.2 通过宿主蛋白拮抗干扰素第37页
    6 热休克蛋白第37-40页
        6.1 HSP60第38页
        6.2 HSP70第38-39页
        6.3 HSP90第39页
        6.4 sHSPs第39-40页
    7 HSP27功能介绍第40-44页
        7.1 HSP27抗凋亡功能第40-42页
        7.2 HSP27与免疫应答第42页
        7.3 HSP27与病毒感染第42-44页
第2章 目的与意义第44-45页
第3章 材料与方法第45-57页
    1 材料第45-48页
        1.1 细菌、细胞和病毒第45页
        1.2 质粒第45-47页
            1.2.1 真核表达质粒第45-46页
            1.2.2 启动子相关质粒第46-47页
            1.2.3 克隆质粒第47页
            1.2.4 RNAi质粒第47页
            1.2.5 细胞定位质粒第47页
            1.2.6 泛素化相关质粒第47页
        1.3 抗体第47-48页
        1.4 siRNA第48页
        1.5 主要试剂第48页
        1.6 重要仪器和设备第48页
    2 主要方法第48-57页
        2.1 DNA实验第48-49页
            2.1.1 基因克隆第48-49页
            2.1.2 DNA回收和质粒抽提第49页
            2.1.3 基因组DNA提取第49页
            2.1.4 基因突变技术第49页
        2.2 RNA实验第49-51页
            2.2.1 TRIzol法抽提细胞总RNA第49-50页
            2.2.2 RT-PCR第50页
            2.2.3 荧光定量PCR第50-51页
        2.3 蛋白实验第51-54页
            2.3.1 细胞蛋白抽提及浓度测定第51页
            2.3.2 荧光素酶活性检测实验第51页
            2.3.3 免疫共沉淀实验步骤第51-52页
            2.3.4 蛋白的泛素化检测实验第52页
            2.3.5 SDS-PAGE电泳第52-53页
            2.3.6 蛋白质转膜第53页
            2.3.7 Western Blot实验第53页
            2.3.8 GTP酶活性测定实验第53-54页
            2.3.9 流感病毒聚合酶活性测定实验第54页
        2.4 细胞实验第54-56页
            2.4.1 质粒转染实验第54页
            2.4.2 siRNA转染实验第54-55页
            2.4.3 间接免疫荧光第55页
            2.4.4 蛋白亚细胞定位观察第55页
            2.4.5 TCID50的测定第55-56页
            2.4.6 空斑法检测病毒含量第56页
        2.5 肺组织病理切片制作第56页
        2.6 统计学处理第56-57页
第4章 结果与讨论第57-103页
    1 抗流感病毒基因的筛选与功能验证第57-85页
        1.1 猪H1N1流感病毒感染模型建立第57-58页
            1.1.1 临床症状第57页
            1.1.2 病理变化第57-58页
        1.2 猪H1N1流感病毒感染肺组织芯片第58-66页
            1.2.1 肺组织RNA样品检测第58页
            1.2.2 芯片分析第58-64页
                1.2.2.1 聚类分析第58-59页
                1.2.2.2 GO分析第59-60页
                1.2.2.3 主要的差异表达基因第60-63页
                1.2.2.4 差异基因Pathway分析第63-64页
            1.2.3 芯片结果RT-PCR验证第64-65页
            1.2.4 RT-PCR检测猪肺组织ISGs表达变化第65-66页
        1.3 肺组织差异基因抗病毒功能第66-69页
            1.3.1 干扰素诱导基因对H1N1病毒增殖的影响第66-67页
            1.3.2 干扰素诱导基因对H5N1病毒增殖的影响第67页
            1.3.3 猪宿主防御肽对H5N1病毒增殖影响第67-68页
            1.3.4 猪干扰素启动子活性检测第68-69页
            1.3.5 干扰素诱导基因过表达对干扰素启动子影响第69页
        1.4 IRF1抗病毒机制研究第69-71页
            1.4.1 IRF1过表达对H5N1病毒复制的影响第69-70页
            1.4.2 IRF1过表达对VSV复制的影响第70-71页
            1.4.3 IRF1过表达对干扰素信号通路影响第71页
        1.5 GBP1抗病毒机制研究第71-79页
            1.5.1 GBP1过表达对流感病毒增殖的影响第71-73页
                1.5.1.1 GBP1抑制各种亚型猪流感病毒的复制第71-72页
                1.5.1.2 GBP1对H5N1流感病毒不同形式RNA的影响第72-73页
            1.5.2 敲除GBP1对流感病毒增殖的影响第73-74页
            1.5.3 GTP结合位点与抗病毒有关第74-76页
                1.5.3.1 GBP1抗病毒结构域确定第74页
                1.5.3.2 GTP结合位点突变后对病毒增殖影响第74-75页
                1.5.3.3 GBP1的GTPase酶活性测定第75-76页
            1.5.4 GBP1对干扰素信号通路通路的影响第76页
            1.5.5 GBP1抑制流感病毒聚合酶活力第76-77页
            1.5.6 GBP1与NP蛋白互作第77-78页
            1.5.7 GBP1与NP在细胞核周围共定位第78-79页
        1.6 讨论第79-84页
        1.7 小结第84-85页
    2 HSP27拮抗宿主干扰素信号通路研究第85-103页
        2.1 H5N1感染人的A549细胞后总蛋白表达变化第85页
        2.2 H5N1感染人的A549细胞后HSP27蛋白表达变化第85-86页
        2.3 其他RNA病毒感染细胞后HSP27变化第86页
        2.4 HSP27定点突变与表达第86-87页
        2.5 HSP27过表达对H5N1增殖影响第87-88页
        2.6 HSP27过表达对VSV病毒增殖的影响第88页
        2.7 HSP27沉默对VSV增殖的影响第88-89页
        2.8 HSP27过表达对干扰素等启动子影响第89-91页
        2.9 HSP27过表达抑制VISA和TRIF介导的抗病毒作用以及IRF3磷酸化第91-92页
        2.10 HSP27沉默对干扰素等启动子影响第92-93页
        2.11 HSP27与IFN-β通路接头分子互作第93页
        2.12 HSP27对VISA、TRAF3和TRAF6表达影响第93-94页
        2.13 HSP27影响接头分子泛素化第94页
        2.14 HSP27通过K48泛素化方式降解TRAF3和TRAF6第94-95页
        2.15 HSP27不改变TRAF3和TRAF6的K63泛素化第95-96页
        2.16 HSP27定位于线粒体第96-97页
        2.17 HSP27磷酸化抑制剂对VSV-GFP病毒增殖影响第97-98页
        2.18 HSP27磷酸化对干扰素启动子活性以及H5N1病毒CPE影响第98-99页
        2.19 HSP27磷酸化位点突变体与VISA互作研究第99-100页
        2.20 讨论第100-102页
        2.21 小结第102-103页
第5章 总结第103-104页
参考文献第104-121页
个人简历第121-122页
发表的主要论文第122-124页
致谢第124页

论文共124页,点击 下载论文
上一篇:东北盆地群重磁特征与深部结构研究
下一篇:基于微波网络理论的射频光子系统研究