| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 绪论 | 第11-21页 |
| 1.1 遗传多样性概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 遗传多样性含义 | 第11页 |
| 1.1.2 遗传多样性研究意义 | 第11-12页 |
| 1.1.3 遗传多样性研究方法 | 第12页 |
| 1.1.4 SSR标记 | 第12-13页 |
| 1.1.5 SSR标记在濒危植物遗传多样性研究中的应用 | 第13-15页 |
| 1.2 伯乐树研究进展 | 第15-18页 |
| 1.2.1 形态特征 | 第15页 |
| 1.2.2 地理分布及生境 | 第15-16页 |
| 1.2.3 繁殖栽培技术 | 第16页 |
| 1.2.4 形态解剖研究 | 第16-17页 |
| 1.2.5 遗传多样性及谱系地理学研究 | 第17-18页 |
| 1.2.6 其他方面的研究 | 第18页 |
| 1.3 本研究的意义及技术路线 | 第18-21页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第18-19页 |
| 1.3.2 技术路线 | 第19-21页 |
| 2 伯乐树SSR-PCR反应体系的优化 | 第21-29页 |
| 2.1 试验材料 | 第21页 |
| 2.2 试验仪器设备和试剂 | 第21-22页 |
| 2.2.1 主要试验仪器设备 | 第21页 |
| 2.2.2 主要试剂及配置 | 第21-22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 基因组总DNA提取与检测 | 第22-23页 |
| 2.3.1.1 DNA提取 | 第22页 |
| 2.3.1.2 DNA检测 | 第22-23页 |
| 2.3.2 SSR-PCR反应体系单因素试验设计 | 第23页 |
| 2.3.3 SSR-PCR反应体系正交试验设计 | 第23页 |
| 2.3.4 退火温度的筛选 | 第23页 |
| 2.3.5 SSR-PCR扩增产物检测 | 第23-24页 |
| 2.3.5.1 玻璃板的处理 | 第23页 |
| 2.3.5.2 非变性聚丙烯酰胺凝胶制备 | 第23-24页 |
| 2.3.5.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第24页 |
| 2.3.5.4 银染 | 第24页 |
| 2.3.6 SSR-PCR最佳反应体系的验证 | 第24页 |
| 2.4 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.4.1 基因组总DNA提取与检测 | 第24页 |
| 2.4.2 单因素试验优化SSR-PCR反应体系 | 第24-25页 |
| 2.4.3 正交试验优化SSR-PCR反应体系 | 第25-26页 |
| 2.4.4 退火温度对SSR-PCR扩增的影响 | 第26-27页 |
| 2.4.5 伯乐树SSR-PCR最佳反应体系的验证 | 第27页 |
| 2.5 讨论 | 第27-29页 |
| 3 基于SSR标记的伯乐树遗传多样性分析 | 第29-43页 |
| 3.1 试验材料 | 第29-31页 |
| 3.2 试验仪器设备和试剂 | 第31页 |
| 3.3 试验方法 | 第31-32页 |
| 3.3.1 基因组总DNA的提取与检测 | 第31页 |
| 3.3.2 SSR-PCR扩增 | 第31页 |
| 3.3.3 数据处理及分析 | 第31-32页 |
| 3.4 结果与分析 | 第32-39页 |
| 3.4.1 伯乐树遗传多样性 | 第32-34页 |
| 3.4.2 伯乐树种群遗传分化 | 第34-35页 |
| 3.4.3 伯乐树遗传结构 | 第35-39页 |
| 3.5 讨论 | 第39-43页 |
| 3.5.1 伯乐树遗传多样性 | 第39页 |
| 3.5.2 伯乐树种群遗传分化 | 第39-40页 |
| 3.5.3 伯乐树遗传结构 | 第40页 |
| 3.5.4 伯乐树濒危机制及保护策略 | 第40-43页 |
| 4 结论与展望 | 第43-45页 |
| 4.1 结论 | 第43-44页 |
| 4.2 展望 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-53页 |
| 附录 | 第53-59页 |
| 附录A 伯乐树287株个体Q值(K=2) | 第53-58页 |
| 附录B 攻读学位期间的主要学术成果 | 第58-59页 |
| 致谢 | 第59页 |