| 摘要 | 第2-3页 |
| abstract | 第3-4页 |
| 第一章 绪论 | 第8-25页 |
| 1.1 引言 | 第8页 |
| 1.2 荧光细胞成像 | 第8-19页 |
| 1.2.1 荧光探针的组成 | 第8-19页 |
| 1.2.1.1 荧光分子 | 第9-14页 |
| 1.2.1.2 靶向基团 | 第14-19页 |
| 1.3 磁性荧光探针 | 第19-23页 |
| 1.3.1 药物载体 | 第19-20页 |
| 1.3.2 核磁共振成像 | 第20-22页 |
| 1.3.3 循环肿瘤细胞检测分离 | 第22-23页 |
| 1.4 选题依据和研究内容 | 第23-25页 |
| 第二章 PTC-Cu纳米棒的制备及细胞成像 | 第25-41页 |
| 2.1 引言 | 第25-26页 |
| 2.2 实验部分 | 第26-30页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第26-27页 |
| 2.2.2 K_4PTC的制备 | 第27页 |
| 2.2.3 PTC-Cu纳米棒的制备 | 第27页 |
| 2.2.4 PTC-Cu纳米棒的表征 | 第27-29页 |
| 2.2.4.1 扫描电子显微镜(SEM) | 第27页 |
| 2.2.4.2 透射电子显微镜(TEM) | 第27-28页 |
| 2.2.4.3 紫外光谱(UV-vis) | 第28页 |
| 2.2.4.4 荧光光谱(FL) | 第28页 |
| 2.2.4.5 傅里叶变换红外光谱（FT-IR） | 第28页 |
| 2.2.4.6 X射线衍射(XRD) | 第28页 |
| 2.2.4.7 电感耦合等离子体原子发射光谱(ICP-AES) | 第28页 |
| 2.2.4.8 激光扫描共聚焦荧光显微镜(CLSM) | 第28-29页 |
| 2.2.5 细胞培养与成像 | 第29-30页 |
| 2.2.5.1 细胞培养 | 第29页 |
| 2.2.5.2 细胞活性检测(MTT) | 第29页 |
| 2.2.5.3 细胞成像 | 第29-30页 |
| 2.2.5.4 细胞共培养成像 | 第30页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第30-40页 |
| 2.3.1 PTC-Cu纳米棒的形貌表征 | 第30-33页 |
| 2.3.2 PTC-Cu纳米棒的光谱特征 | 第33-37页 |
| 2.3.3 PTC-Cu纳米棒的细胞活性 | 第37页 |
| 2.3.4 PTC-Cu纳米棒的细胞成像效果 | 第37-40页 |
| 2.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第三章 PTC-Cu纳米棒的成像效果的改善 | 第41-56页 |
| 3.1 前言 | 第41页 |
| 3.2 实验部分 | 第41-45页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第42页 |
| 3.2.2 不同轴径比PTC-Cu纳米棒的制备 | 第42-43页 |
| 3.2.3 PTC-Cu@PG_(12)-b-PEO205-b-PG_(12)和PTC-Cu@PLL的制备 | 第43页 |
| 3.2.4 硅化PTC-Cu纳米棒的制备 | 第43页 |
| 3.2.5 PTC-Cu纳米棒的表征 | 第43-44页 |
| 3.2.5.1 X射线能谱(EDX) | 第43页 |
| 3.2.5.2 透射电子显微镜(TEM) | 第43页 |
| 3.2.5.3 显微红外光谱(FT-IR) | 第43-44页 |
| 3.2.5.4 Zeta电位 | 第44页 |
| 3.2.5.5 激光扫描共聚焦荧光显微镜(CLSM) | 第44页 |
| 3.2.6 细胞培养与成像 | 第44-45页 |
| 3.2.6.1 细胞培养 | 第44页 |
| 3.2.6.2 细胞共培养成像 | 第44页 |
| 3.2.6.3 细胞共染色成像 | 第44-45页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第45-55页 |
| 3.3.1 轴径比对成像效果的影响 | 第45-47页 |
| 3.3.2 表面电荷对成像效果的影响 | 第47-50页 |
| 3.3.3 表面不同包覆物对成像效果的影响 | 第50-52页 |
| 3.3.4 K_4PTC单体对成像效果的影响 | 第52-54页 |
| 3.3.5 与罗丹明B共染色对细胞区分的辅助 | 第54-55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 第四章 磁性多功能荧光探针的制备与应用 | 第56-72页 |
| 4.1 引言 | 第56页 |
| 4.2 实验部分 | 第56-61页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第56-57页 |
| 4.2.2 Fe_3O_4纳米粒子的制备 | 第57页 |
| 4.2.3 Fe_3O_4@PVP的制备 | 第57-58页 |
| 4.2.4 PTC-APTEs的制备 | 第58页 |
| 4.2.5 Fe_3O_4@PTC@RGD的制备 | 第58页 |
| 4.2.6 硅化荧光纳米粒子的表征 | 第58-60页 |
| 4.2.6.1 透射电子显微镜(TEM) | 第58页 |
| 4.2.6.2 紫外可见光谱(UV-vis) | 第58-59页 |
| 4.2.6.3 荧光光谱(FL) | 第59页 |
| 4.2.6.4 显微红外光谱(FT-IR) | 第59页 |
| 4.2.6.5 X射线衍射(XRD) | 第59页 |
| 4.2.6.6 动态光散射(DLS) | 第59页 |
| 4.2.6.7 激光扫描共聚焦荧光显微镜(CLSM) | 第59-60页 |
| 4.2.7 细胞培养与成像 | 第60-61页 |
| 4.2.7.1 细胞培养 | 第60页 |
| 4.2.7.2 细胞活性检测(MTT) | 第60页 |
| 4.2.7.3 细胞成像 | 第60页 |
| 4.2.7.4 细胞共培养成像 | 第60-61页 |
| 4.2.7.5 细胞共染色成像 | 第61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-71页 |
| 4.3.1 PTC-APTEs的表征 | 第61-62页 |
| 4.3.2 Fe_3O_4@PTC的表征 | 第62-66页 |
| 4.3.3 MNPs@PTC的生物相容性 | 第66-67页 |
| 4.3.4 MNPs的细胞成像 | 第67-71页 |
| 4.4 本章小结 | 第71-72页 |
| 第五章 结论与展望 | 第72-74页 |
| 5.1 结论 | 第72-73页 |
| 5.2 展望 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-81页 |
| 研究生工作期间发表的论文和申请专利情况 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
