| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写对照表 | 第12-13页 |
| 第1章 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 猪卵母细胞体外成熟影响因素研究进展 | 第13-15页 |
| 1.1.1 卵巢的采集及转运对卵母细胞体外成熟培养效果的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.2 卵母细胞的收集方法对卵母细胞体外成熟培养效果的影响 | 第14页 |
| 1.1.3 不同培养基配方对卵母细胞体外成熟培养效果的影响 | 第14-15页 |
| 1.1.4 培养条件对卵母细胞体外成熟培养效果的影响 | 第15页 |
| 1.2 猪孤雌胚胎体外发育的研究进展 | 第15-17页 |
| 1.2.1 孤雌激活方法对猪孤雌胚胎体外发育的影响 | 第16页 |
| 1.2.2 卵母细胞的卵龄对猪孤雌胚胎体外发育的影响 | 第16页 |
| 1.2.3 培养条件对猪孤雌胚胎体外发育的影响 | 第16-17页 |
| 1.3 基因CDX2、GLUT1、HSP70和ploy A的功能及其对卵母细胞体外发育影响的可能性 | 第17-19页 |
| 1.3.1 CDX2基因 | 第18页 |
| 1.3.2 GLUT1基因 | 第18页 |
| 1.3.3 HSP70基因 | 第18-19页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第19-21页 |
| 第2章 EGF对猪卵母细胞体外成熟及孤雌胚胎发育的影响 | 第21-29页 |
| 2.1 材料试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要的仪器及耗材 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-26页 |
| 2.2.1 猪卵母细胞的采集和体外成熟培养 | 第22-24页 |
| 2.2.2 卵母细胞的孤雌激活 | 第24-26页 |
| 2.3 实验结果 | 第26-28页 |
| 2.4 讨论 | 第28-29页 |
| 第3章 LIF对猪卵母细胞体外成熟及孤雌胚胎发育的影响 | 第29-33页 |
| 3.1 材料试剂 | 第29页 |
| 3.1.1 主要的仪器及耗材 | 第29页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 3.2 实验方法 | 第29-30页 |
| 3.2.1 猪卵母细胞的采集和体外成熟培养 | 第29-30页 |
| 3.2.2 孤雌激活 | 第30页 |
| 3.3 结果 | 第30-32页 |
| 3.3.1 比较成熟培养基中添加不同浓度LIF对卵母细胞体外成熟及孤雌胚胎体外发育的影响 | 第30-31页 |
| 3.3.2 比较胚胎培养基中添加不同浓度的LIF对孤雌胚胎体外发育的影响 | 第31页 |
| 3.3.3 比较成熟培养基及胚胎培养基中均添加不同浓度的LIF对孤雌胚胎体外发育的影响 | 第31-32页 |
| 3.4 讨论 | 第32-33页 |
| 第4章 卵丘细胞对猪卵母细胞体外成熟及孤雌胚胎发育的影响 | 第33-37页 |
| 4.1 材料试剂 | 第33页 |
| 4.1.1 主要的仪器及耗材 | 第33页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第33页 |
| 4.2 试验方法 | 第33-34页 |
| 4.2.1 猪卵母细胞的采集和体外成熟培养 | 第33-34页 |
| 4.2.2 孤雌激活 | 第34页 |
| 4.3 实验结果 | 第34-35页 |
| 4.4 讨论 | 第35-37页 |
| 第5章 基因GLUT1、CDX2、HSP70和ploy A的表达分析 | 第37-45页 |
| 5.1 材料试剂 | 第37-38页 |
| 5.1.1 主要的仪器设备 | 第37-38页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第38页 |
| 5.2 试验方法 | 第38-40页 |
| 5.2.1 实验方案 | 第38页 |
| 5.2.2 实验材料的准备 | 第38页 |
| 5.2.3 RNA的提取 | 第38-39页 |
| 5.2.4 cDNA第一链的合成 | 第39-40页 |
| 5.2.5 实时荧光定量PCR进行基因表达的分析 | 第40页 |
| 5.3 实验结果 | 第40-42页 |
| 5.3.1 基因GLUT1、CDX2、HSP70和ploy A在不同浓度LIF处理后的成熟卵母细胞间的表达 | 第40-41页 |
| 5.3.2 基因GLUT1、CDX2、HSP70和ployA在卵母细胞及孤雌胚胎不同发育阶段的表达 | 第41-42页 |
| 5.4 讨论 | 第42-45页 |
| 结论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53-55页 |
| 攻读硕士学位期间的发表文章 | 第55页 |
