| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 概述 | 第14-17页 |
| 1.1.1 CD36简介 | 第14-15页 |
| 1.1.2 CD36结构与功能 | 第15-16页 |
| 1.1.3 CD36与脂蛋白参与动脉粥样硬化病变 | 第16页 |
| 1.1.4 CD36作为潜在的治疗靶标 | 第16-17页 |
| 1.2 固相合成跨膜多肽及其纯化 | 第17-20页 |
| 1.2.1 固相合成多肽(SPPS)概述 | 第17-19页 |
| 1.2.2 多肽的纯化及鉴定方法 | 第19-20页 |
| 1.3 跨膜蛋白跨膜区的相互作用研究 | 第20-25页 |
| 1.3.1 概述 | 第20-22页 |
| 1.3.2 跨膜蛋白之间相互作用生物检测方法：TOXCAT | 第22-23页 |
| 1.3.3 色氨酸诱导的淬火方法(TrIQ) | 第23-25页 |
| 1.4 课题研究意义与主要研究内容 | 第25-28页 |
| 1.4.1 课题研究意义 | 第25页 |
| 1.4.2 主要研究内容 | 第25-28页 |
| 第二章 实验部分 | 第28-48页 |
| 2.1 实验仪器及材料 | 第28-30页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.1.2 实验试剂与材料 | 第29-30页 |
| 2.2 跨膜蛋白在生物体内相互作用的研究 | 第30-40页 |
| 2.2.1 TOXCAT | 第30-35页 |
| 2.2.2 MalE互补实验 | 第35-36页 |
| 2.2.3 蛋白免疫印迹(Western blot) | 第36-38页 |
| 2.2.4 TOXCAT分析跨膜区突变嵌合体 | 第38-40页 |
| 2.3 跨膜区多肽合成和纯化 | 第40-44页 |
| 2.3.1 利用Fmoc固相合成跨膜多肽 | 第40-41页 |
| 2.3.2 多肽上连有的树脂的切除 | 第41页 |
| 2.3.3 荧光标记多肽 | 第41-42页 |
| 2.3.4 跨膜多肽粗品液相分析与鉴定 | 第42-43页 |
| 2.3.5 多肽的RP-HPLC分离与纯化 | 第43-44页 |
| 2.4 跨膜多肽相互作用的构象研究 | 第44-48页 |
| 2.4.1 样品的制备及浓度的标定 | 第45页 |
| 2.4.2 TrIQ检测 | 第45-48页 |
| 第三章 实验结果与分析 | 第48-82页 |
| 3.1 跨膜蛋白CD36 TM1的相互作用研究 | 第48-62页 |
| 3.1.1 TOXCAT检测 | 第48-62页 |
| 3.1.2 小结 | 第62页 |
| 3.2 跨膜多肽合成和分离纯化的研究 | 第62-73页 |
| 3.2.1 突变G16I多肽合成和纯化 | 第63-68页 |
| 3.2.2 突变G23I多肽合成和纯化 | 第68-73页 |
| 3.2.3 小结 | 第73页 |
| 3.3 CD36跨膜多肽相互作用的构象研究 | 第73-82页 |
| 3.3.1 G16I跨膜多肽的TrIQ分析 | 第74-77页 |
| 3.3.2 G23I跨膜多肽的TrIQ分析 | 第77-79页 |
| 3.3.3 小结 | 第79-82页 |
| 第四章 结论及展望 | 第82-84页 |
| 参考文献 | 第84-88页 |
| 致谢 | 第88-90页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第90-92页 |
| 作者和导师简介 | 第92-93页 |
| 附件 | 第93-94页 |