| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 前言 | 第14-35页 |
| 1. 多糖的研究概况 | 第15-20页 |
| 1.1 多糖的制备 | 第15-17页 |
| 1.1.1 动物多糖的提取 | 第15-16页 |
| 1.1.2 植物多糖的提取 | 第16页 |
| 1.1.3 微生物多糖的提取 | 第16-17页 |
| 1.2 多糖的分离纯化 | 第17-18页 |
| 1.2.1 分级沉淀法 | 第17页 |
| 1.2.2 色谱分离法 | 第17-18页 |
| 1.2.3 其他方法 | 第18页 |
| 1.3 多糖的结构分析 | 第18-20页 |
| 1.3.1 单糖组成的测定 | 第18页 |
| 1.3.2 甲基化分析 | 第18页 |
| 1.3.3 红外光谱（Infrared spectroscopic，IR）分析 | 第18-19页 |
| 1.3.4 质谱（Mass spectrum，MS）分析 | 第19页 |
| 1.3.5 核磁共振（Nuclear magnetic resonance，NMR）波谱分析 | 第19-20页 |
| 2 多糖的抗肿瘤作用 | 第20-24页 |
| 2.1 多糖的细胞毒及免疫增强作用 | 第20-22页 |
| 2.2 多糖作为抗癌药物载体 | 第22-24页 |
| 3 海洋软体动物的研究 | 第24-30页 |
| 3.1 海洋软体动物概况 | 第24-25页 |
| 3.2 海洋软体动物分类 | 第25-29页 |
| 3.3 海洋软体动物的营养价值 | 第29页 |
| 3.4 海洋软体动物的药用价值 | 第29-30页 |
| 4 牡蛎活性物质的研究 | 第30-33页 |
| 4.1 牡蛎的营养价值 | 第30页 |
| 4.2 牡蛎活性肽的研究 | 第30-31页 |
| 4.3 牡蛎中牛磺酸的研究 | 第31页 |
| 4.4 牡蛎小分子化合物的研究 | 第31-32页 |
| 4.5 牡蛎中多糖的研究 | 第32-33页 |
| 5 本课题的立体背景和研究思路 | 第33-35页 |
| 第二章 牡蛎多糖的提取和理化性质分析 | 第35-47页 |
| 1 材料与仪器 | 第35页 |
| 2 实验方法 | 第35-38页 |
| 2.1 牡蛎粗多糖的提取 | 第35-37页 |
| 2.1.1 常温提取牡蛎粗多糖 | 第35-36页 |
| 2.1.2 热水提取牡蛎粗多糖 | 第36页 |
| 2.1.3 碱法提取牡蛎粗多糖 | 第36页 |
| 2.1.4 牡蛎粗多糖的去蛋白 | 第36-37页 |
| 2.2 粗多糖的基本理化性质测定 | 第37-38页 |
| 2.2.1 总糖含量测定 | 第37页 |
| 2.2.2 蛋白含量测定 | 第37页 |
| 2.2.3 单糖组成分析 | 第37-38页 |
| 2.2.4 分子量测定 | 第38页 |
| 3 实验结果 | 第38-46页 |
| 3.1 牡蛎粗多糖的提取 | 第38-41页 |
| 3.1.1 碱提取条件的确定 | 第38-41页 |
| 3.1.2 提取结果 | 第41页 |
| 3.1.3 牡蛎粗多糖的去蛋白 | 第41页 |
| 3.2 多糖的基本理化性质测定 | 第41-46页 |
| 3.2.1 硫酸-苯酚法测定总糖含量 | 第41-43页 |
| 3.2.2 Folin-酚法测定粗多糖的蛋白含量 | 第43-44页 |
| 3.2.3 单糖组成的测定 | 第44-45页 |
| 3.2.4 分子量的测定 | 第45-46页 |
| 4 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 牡蛎水提多糖的分离纯化和结构分析 | 第47-67页 |
| 1 材料与仪器 | 第47页 |
| 2 实验方法 | 第47-51页 |
| 2.1 DEAE Sepharose FF 阴离子交换层析 | 第47-48页 |
| 2.2 Sepharcryl S-400 凝胶柱层析 | 第48页 |
| 2.3 总糖含量测定 | 第48页 |
| 2.4 蛋白含量测定 | 第48页 |
| 2.5 单糖组成测定 | 第48-49页 |
| 2.6 纯度和重均相对分子质量的测定 | 第49页 |
| 2.7 红外光谱分析 | 第49页 |
| 2.8 电喷雾质谱分析 | 第49-50页 |
| 2.8.1 样品的部分酸降解 | 第49页 |
| 2.8.2 降解液的 TLC 分析 | 第49页 |
| 2.8.3 寡糖的制备即降解液的 superdex30 凝胶柱层析 | 第49-50页 |
| 2.8.4 正负离子质谱 | 第50页 |
| 2.9 甲基化分析 | 第50-51页 |
| 2.9.1 甲基化 | 第50-51页 |
| 2.9.2 GC-MS 分析 | 第51页 |
| 2.10 核磁共振分析 | 第51页 |
| 3 实验结果 | 第51-65页 |
| 3.1 DEAE Sepharose FF 阴离子交换层析 | 第51-53页 |
| 3.2 Sepharcryl S-400 凝胶柱层析 | 第53页 |
| 3.3 单糖组成测定 | 第53-54页 |
| 3.4 纯度和重均相对分子质量的测定 | 第54-55页 |
| 3.5 红外光谱分析 | 第55-56页 |
| 3.6 电喷雾质谱分析 | 第56-60页 |
| 3.6.1 多糖部分酸降解液的 TLC 分析结果 | 第56页 |
| 3.6.2 部分酸降解液 superdex30 凝胶柱层析结果 | 第56-59页 |
| 3.6.3 寡糖的电喷雾质谱分析 | 第59-60页 |
| 3.7 甲基化分析结果 | 第60-62页 |
| 3.8 核磁分析结果 | 第62-65页 |
| 4 本章小结 | 第65-67页 |
| 第四章 牡蛎水提多糖的硫酸酯化修饰 | 第67-77页 |
| 1 材料与仪器 | 第67页 |
| 2 实验方法 | 第67-70页 |
| 2.1 SO 3-吡啶法 | 第67-68页 |
| 2.2 氯磺酸-甲酰胺法 | 第68页 |
| 2.3 硫酸酯化样品的红外分析 | 第68页 |
| 2.4 分子量测定 | 第68-69页 |
| 2.5 硫酸酯化样品的硫酸根含量测定 | 第69-70页 |
| 2.5.1 盐酸降解法降解硫酸根 | 第69页 |
| 2.5.2 氧瓶燃烧法降解硫酸根 | 第69页 |
| 2.5.3 离子色谱法测定硫酸根 | 第69-70页 |
| 2.6 核磁共振分析 | 第70页 |
| 3 实验结果 | 第70-76页 |
| 3.1 SO3-吡啶法 | 第70页 |
| 3.2 氯磺酸-甲酰胺法 | 第70页 |
| 3.3 红外分析结果 | 第70-71页 |
| 3.4 分子量测定结果 | 第71-72页 |
| 3.5 硫酸酯化样品的硫酸根含量测定结果 | 第72-75页 |
| 3.6 硫酸酯化样品核磁分析结果 | 第75-76页 |
| 4 本章小结 | 第76-77页 |
| 第五章 牡蛎硫酸酯化多糖的生物活性评价 | 第77-82页 |
| 1 材料与仪器 | 第77页 |
| 2 实验方法 | 第77-79页 |
| 2.1 抗凝血活性实验 | 第77-78页 |
| 2.2. 体外抗肿瘤活性筛选实验 | 第78-79页 |
| 2.2.1 MTT 法测定 CT-S2 对 HL-60、K562 的体外抑制作用 | 第78页 |
| 2.2.2 SRB 法测定 CT-S2 对 A-549、HCT-116 和 hela 的体外抑制作用 | 第78-79页 |
| 3 实验结果 | 第79-80页 |
| 3.1 抗凝血活性 | 第79页 |
| 3.2. 体外抗肿瘤活性筛选 | 第79-80页 |
| 4 本章小结 | 第80-82页 |
| 结语 | 第82-83页 |
| 创新点 | 第83-84页 |
| 参考文献 | 第84-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
| 个人简历 | 第92页 |
| 发表的学术论文 | 第92-93页 |
