| 中文摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第一部分 理论研究 | 第15-26页 |
| 1 中医学对RSV肺炎的相关认识 | 第15-19页 |
| 1.1 历史沿革 | 第15-16页 |
| 1.2 小儿肺炎喘嗽的病因病机概述 | 第16-17页 |
| 1.3 辨证分型 | 第17页 |
| 1.4 现代中医药治疗RSV肺炎的研究 | 第17-19页 |
| 2 西医学对RSV肺炎的认识 | 第19-23页 |
| 2.1 RSV及TLR3、TLR4的化学生物学特性及其信号通路 | 第19-23页 |
| 3 金欣口服液的前期实验研究成果 | 第23-24页 |
| 4 研究思路 | 第24-26页 |
| 第二部分 体外实验研究 | 第26-40页 |
| 1 实验材料 | 第26-29页 |
| 1.1 实验细胞 | 第26页 |
| 1.2 实验动物 | 第26页 |
| 1.3 实验病毒 | 第26页 |
| 1.4 实验药物 | 第26页 |
| 1.5 实验试剂 | 第26-27页 |
| 1.6 实验仪器及设备 | 第27-28页 |
| 1.7 溶液的配制 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.1 Hep-2细胞及RAW264.7细胞的培养 | 第29页 |
| 2.2 金欣口服液及其含药血清的制备 | 第29页 |
| 2.3 MTT法测定药物最大无毒浓度检测步骤 | 第29-30页 |
| 2.4 RSV感染RAW264.7细胞模型的制备 | 第30页 |
| 2.5 实验分组、给药方案及标本的采集 | 第30页 |
| 2.6 TLR4 siRNA干扰实验 | 第30-31页 |
| 2.7 实时荧光定量PCR法检测TLR4、TAK1 mRNA的转录水平 | 第31-32页 |
| 2.8 免疫印迹法(Western blot)具体步骤 | 第32-34页 |
| 3 数据统计 | 第34-35页 |
| 4 结果 | 第35-40页 |
| 4.1 利巴韦林对RAW264.7、金欣口服液含药血清细胞最大无毒浓度测定结果 | 第35-36页 |
| 4.2 金欣口服液对转染后RAW264.7细胞TLR4、TAK1 mRNA表达的影响 | 第36-38页 |
| 4.3 转染后金欣口服液对RAW264.7细胞TLR4、TAK1、蛋白表达的影响 | 第38-40页 |
| 第三部分 体内实验研究 | 第40-43页 |
| 1 实验材料 | 第40页 |
| 1.1 实验病毒 | 第40页 |
| 1.2 实验动物 | 第40页 |
| 1.3 实验用金欣口服液 | 第40页 |
| 1.4 实验试剂 | 第40页 |
| 1.5 实验仪器及设备 | 第40页 |
| 1.6 溶液的配制 | 第40页 |
| 2 实验方法 | 第40-41页 |
| 2.1 RSV感染BALB/c小鼠肺炎模型的制备及分组 | 第40-41页 |
| 2.2 Western Blot法检测BALB/c小鼠肺组织TLR4、TAK1蛋白表达 | 第41页 |
| 2.3 肺组织病理评价金欣口服液干预后RSV感染BALB/c小鼠肺组织病变情况 | 第41页 |
| 3 统计方法 | 第41页 |
| 4 结果 | 第41-43页 |
| 4.1 金欣口服液对RSV感染BALB/c小鼠肺组织TLR4、TAK1表达的影响 | 第41-42页 |
| 4.2 RSV感染24小时后病理读片结果(见附图3-2) | 第42-43页 |
| 第四部分 讨论 | 第43-46页 |
| 第五部分 结语 | 第46-48页 |
| 1 结论 | 第46页 |
| 2 创新之处 | 第46页 |
| 3 问题与展望 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 附图 | 第53-54页 |
| 英文縮略词表 | 第54-56页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文与撰写学术著作 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 个人简历 | 第58页 |
