| Contents | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-28页 |
| 1.1 蓝藻及研究背景 | 第11-16页 |
| 1.1.1 蓝细菌、聚球藻PCC7942和鱼腥藻PCC7120 | 第11-13页 |
| 1.1.2 蓝藻的基因工程应用 | 第13-14页 |
| 1.1.3 蓝藻的生态危害 | 第14-16页 |
| 1.2 聚球藻PCC7942和鱼腥藻PCC7120的分子及遗传学操作 | 第16-18页 |
| 1.2.1 蓝藻质粒与载体构建 | 第16-17页 |
| 1.2.2 蓝藻外源基因转化 | 第17-18页 |
| 1.2.3 蓝藻突变株的筛选 | 第18页 |
| 1.3 蓝藻的悬浮与运动机制 | 第18-20页 |
| 1.3.1 MrpC与蓝藻悬浮 | 第19页 |
| 1.3.2 蓝藻的运动机理 | 第19-20页 |
| 1.4 聚球藻PCC7942中的pil基因 | 第20-26页 |
| 1.4.1 细菌中的pilus | 第20-21页 |
| 1.4.3 蓝藻中的pilus | 第21-24页 |
| 1.4.4 pilA1基因的生物信息学分析 | 第24-26页 |
| 1.5 研究的目的与意义 | 第26-28页 |
| 2 材料和方法 | 第28-47页 |
| 2.1 材料 | 第28-34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-47页 |
| 3 结果与分析 | 第47-66页 |
| 3.1 pilA1的克隆表达及聚球藻7942突变株26D12(ΔpilA1)的回复突变 | 第47-61页 |
| 3.1.1 pil基因的克隆及表达载体的构建 | 第47-49页 |
| 3.1.2 pilA1蛋白的表达纯化和western blotting检测 | 第49-50页 |
| 3.1.3 pilA1基因接合转化系统的构建 | 第50-56页 |
| 3.1.4 聚球藻的菌毛对其自然转化的影响 | 第56-61页 |
| 3.2 pilA1基因在鱼腥藻中的表达 | 第61-66页 |
| 3.2.1 pilA1表达载体的构建及接合转化 | 第61页 |
| 3.2.2 鱼腥藻对抗生素的基础抗性测定 | 第61页 |
| 3.2.3 鱼腥藻转化藻的筛选和培养 | 第61-62页 |
| 3.2.4 转化藻株DNA水平的鉴定 | 第62-63页 |
| 3.2.5 野生鱼腥藻、转化鱼腥藻的全蛋白对比 | 第63-64页 |
| 3.2.6 转化藻株的悬浮特性 | 第64-66页 |
| 4 讨论 | 第66-69页 |
| 4.1 蓝细菌细胞表面附属物 | 第66页 |
| 4.2 基于4型菌毛的运动 | 第66页 |
| 4.3 4型菌毛在运动中的作用 | 第66-68页 |
| 4.4 其他pil基因的功能 | 第68-69页 |
| 5 小结与展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-75页 |
| 致谢 | 第75页 |
