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灵杆菌非特异性核酸酶的原核表达、纯化及活性分析

摘要第5-6页
ABSTRACT第6-7页
第一章 文献综述第11-26页
    1.1 灵杆菌概述第11-14页
        1.1.1 灵杆菌脂多糖第11-12页
        1.1.2 灵杆菌素第12-13页
        1.1.3 灵杆菌几丁质酶第13-14页
        1.1.4 其它第14页
    1.2 核酸酶第14-19页
        1.2.1 常用的核酸酶第15-17页
        1.2.2 具有抗肿瘤作用的核酸酶第17-19页
    1.3 灵杆菌非特异性核酸酶第19-24页
        1.3.1 灵杆菌非特异性核酸酶的理化性质第19-21页
        1.3.2 灵杆菌核酸酶的表达调控第21页
        1.3.3 灵杆菌核酸酶的结构研究第21-22页
        1.3.4 灵杆菌核酸酶的催化机制第22-23页
        1.3.5 灵杆菌核酸酶的应用第23-24页
    1.4 选题的目的、意义及主要研究内容第24-26页
        1.4.1 选题的目的、意义第24-25页
        1.4.2 主要研究内容第25-26页
第二章 灵杆菌非特异性核酸酶分泌表达载体的构建第26-33页
    2.1 材料与试剂第26-28页
        2.1.1 菌种与质粒第26-27页
        2.1.2 工具酶和主要药品第27页
        2.1.3 主要溶液的配方第27-28页
        2.1.4 主要仪器设备第28页
    2.2 实验方法第28-30页
        2.2.1 TSS 法大肠杆菌感受态细胞的制备第28页
        2.2.2 灵杆菌非特异性核酸酶分泌表达载体的构建第28-29页
        2.2.3 SDS-PAGE 电泳第29-30页
        2.2.4 NU 蛋白的诱导表达第30页
    2.3 结果与分析第30-32页
        2.3.1 灵杆菌非特异性核酸酶分泌表达载体的构建第30-32页
        2.3.2 NU 蛋白的诱导表达(T7 表达系统)第32页
    2.4 讨论第32-33页
第三章 灵杆菌非特异性核酸酶胞内表达载体的构建及表达优化第33-39页
    3.1 材料与试剂第33页
        3.1.1 菌种与质粒第33页
        3.1.2 工具酶和主要药品第33页
        3.1.3 实验仪器第33页
    3.2 实验方法第33-34页
        3.2.1 灵杆菌核酸酶原核表达载体的构建第33-34页
        3.2.2 序列分析第34页
        3.2.3 MBP-NU 融合蛋白的诱导表达第34页
    3.3 结果与分析第34-38页
        3.3.1 灵杆菌核酸酶原核表达载体的构建第34-35页
        3.3.2 灵杆菌核酸酶的序列分析第35-36页
        3.3.3 MBP-NU 融合蛋白的诱导表达第36-38页
    3.4 讨论第38-39页
第四章 灵杆菌核酸酶的纯化与活性分析第39-50页
    4.1 材料与试剂第39-40页
        4.1.1 工具酶和主要药品第39页
        4.1.2 主要溶液的配方第39-40页
        4.1.3 实验仪器第40页
    4.2 实验方法第40-42页
        4.2.1 融合蛋白的纯化第40-41页
        4.2.2 纯化 MBP-NU 融合蛋白的保存第41页
        4.2.3 MBP-NU 融合蛋白的活性检测第41页
        4.2.4 EDTA 和PMSF 对MBP-NU 活性的影响第41页
        4.2.5 温度、pH 和盐浓度对MBP-NU 活性的影响第41-42页
        4.2.6 Mg~(2+)浓度对 MBP-NU 活性的影响第42页
        4.2.7 β-巯基乙醇对 MBP-NU 活性的影响第42页
        4.2.8 纯化的 MBP-NU 中蛋白酶活性的检测第42页
        4.2.9 纯化的 MBP-NU 与商业化的 Benzonase 的活性比较第42页
        4.2.10 纯化的 MBP-NU 的去核酸效果检测第42页
    4.3 结果与分析第42-48页
        4.3.1 融合蛋白的纯化第42-43页
        4.3.2 MBP-NU 融合蛋白的活性检测第43-44页
        4.3.3 EDTA 和PMSF 对MBP-NU 活性的影响第44页
        4.3.4 温度、pH 和盐浓度对 MBP-NU 活性的影响第44-45页
        4.3.5 Mg2+浓度对 MBP-NU 活性的影响第45-46页
        4.3.6 β-巯基乙醇对 MBP-NU 活性的影响第46页
        4.3.7 纯化的 MBP-NU 中蛋白酶活性的检测第46-47页
        4.3.8 纯化的 MBP-NU 与商业化产品 Benzonase 的活性比较第47-48页
        4.3.9 纯化的 MBP-NU 的去核酸效果检测第48页
    4.4 讨论第48-50页
第五章 结论第50-51页
参考文献第51-59页
缩略词第59-60页
致谢第60-61页
作者简介第61页

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