| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 前言 | 第10-18页 |
| 1.1 遗传多样性概述 | 第10-13页 |
| 1.1.1 遗传多样性的含义 | 第10页 |
| 1.1.2 鱼类遗传多样性的研究方法 | 第10-13页 |
| 1.1.3 遗传多样性的研究意义 | 第13页 |
| 1.2 ISSR分子标记及研究鱼类遗传多样性的概况 | 第13-15页 |
| 1.2.1 ISSR分子标记的原理 | 第13-14页 |
| 1.2.2 ISSR分子标记的特点 | 第14页 |
| 1.2.3 ISSR分子标记研究鱼类遗传多样性的概况 | 第14-15页 |
| 1.3 黄颡鱼和鲇居群资源及研究现状 | 第15-17页 |
| 1.3.1 黄颡鱼和鲇的生物学特性 | 第15-16页 |
| 1.3.2 黄颡鱼和鲇的经济价值 | 第16页 |
| 1.3.3 黄颡鱼和鲇遗传多样性研究现状 | 第16-17页 |
| 1.4 本研究的目的和意义 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-28页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 实验样本 | 第18页 |
| 2.1.2 主要实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 主要实验试剂 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-24页 |
| 2.2.1 实验溶液的配制 | 第19-20页 |
| 2.2.2 样品预处理 | 第20页 |
| 2.2.3 基因组DNA的提取与检测 | 第20-21页 |
| 2.2.4 ISSR引物筛选 | 第21-22页 |
| 2.2.5 ISSR-PCR反应体系的优化 | 第22-24页 |
| 2.2.6 ISSR-PCR反应条件选择 | 第24页 |
| 2.2.7 ISSR-PCR扩增检测 | 第24页 |
| 2.3 数据统计与分析 | 第24页 |
| 2.4 遗传多样性参数 | 第24-28页 |
| 3 结果 | 第28-40页 |
| 3.1 样品预处理结果 | 第28-29页 |
| 3.2 基因组DNA的检测结果 | 第29页 |
| 3.3 ISSR引物筛选结果 | 第29-30页 |
| 3.4 ISSR-PCR最佳反应体系 | 第30-31页 |
| 3.4.1 ISSR-PCR反应体系正交设计试验结果 | 第30页 |
| 3.4.2 ISSR-PCR最佳反应体系 | 第30-31页 |
| 3.5 ISSR-PCR最佳反应条件 | 第31-32页 |
| 3.5.1 ISSR-PCR最佳循环次数优化结果 | 第31页 |
| 3.5.2 ISSR引物最佳退火温度优化结果 | 第31-32页 |
| 3.6 ISSR-PCR扩增结果 | 第32-35页 |
| 3.7 黄颡鱼居群的遗传多样性与遗传结构 | 第35-36页 |
| 3.7.1 黄颡鱼居群遗传多样性 | 第35页 |
| 3.7.2 黄颡鱼居群遗传结构 | 第35-36页 |
| 3.8 鲇居群的遗传多样性及遗传结构 | 第36-40页 |
| 3.8.1 鲇居群遗传多样性 | 第36-37页 |
| 3.8.2 鲇居群遗传结构 | 第37-40页 |
| 4 讨论 | 第40-46页 |
| 4.1 样品的保存和提取方法 | 第40-41页 |
| 4.2 黄颡鱼和鲇ISSR-PCR的反应体系与条件 | 第41-42页 |
| 4.3 黄颡鱼和鲇遗传多样性 | 第42-44页 |
| 4.3.1 黄颡鱼遗传多样性分析 | 第42-43页 |
| 4.3.2 鲇遗传多样性分析 | 第43-44页 |
| 4.4 黄颡鱼和鲇遗传结构分析 | 第44-46页 |
| 5 结论 | 第46-48页 |
| 参考文献 | 第48-56页 |
| 附录A：三居群间和居群内个体间的遗传距离 | 第56-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第66-67页 |
