| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1、前言 | 第12-16页 |
| 2、实验材料与方法 | 第16-25页 |
| 2.1 实验细胞 | 第16页 |
| 2.2 主要质粒 | 第16页 |
| 2.3 实验试剂 | 第16-18页 |
| 2.3.1 大鼠心肌H9C2细胞培养相关试剂 | 第16页 |
| 2.3.2 建立H_2O_2氧化损伤及丹参抗氧化损伤模型相关试剂 | 第16-17页 |
| 2.3.3 DNA和RNA提取、PCR实验相关试剂 | 第17页 |
| 2.3.4 Western bloting法相关试剂及相关溶液配制 | 第17-18页 |
| 2.3.5 质粒转染相关试剂及配制 | 第18页 |
| 2.3.6 细胞染色相关试剂及配制 | 第18页 |
| 2.4 实验仪器 | 第18页 |
| 2.5 实验方法 | 第18-25页 |
| 2.5.1 细胞培养 | 第18-19页 |
| 2.5.2 细胞计数 | 第19页 |
| 2.5.3 实验技术 | 第19-23页 |
| 2.5.4 实验分组 | 第23页 |
| 2.5.5 实验步骤 | 第23-24页 |
| 2.5.6 统计学分析 | 第24-25页 |
| 3、结果 | 第25-37页 |
| 3.1 建立H_2O_2氧化损伤模型 | 第25-27页 |
| 3.1.1 确定H_2O_2孵育浓度 | 第25-26页 |
| 3.1.2 确定H_2O_2孵育时间 | 第26-27页 |
| 3.2 建立丹参抗氧化损伤模型 | 第27-28页 |
| 3.2.1 确定丹参孵育浓度 | 第27页 |
| 3.2.2 确定丹参孵育时间 | 第27-28页 |
| 3.3 H_2O_2氧化损伤及丹参抗氧化损伤过程中大鼠心肌H9C2细胞数及细胞核形态学改变 | 第28-29页 |
| 3.4 检测H_2O_2及丹参对大鼠心肌H9C2细胞中Nrf2 mRNA的影响 | 第29-30页 |
| 3.5 检测H_2O_2及丹参对大鼠心肌H9C2细胞中Nrf2蛋白的影响 | 第30页 |
| 3.6 Nrf2基因对细胞增殖的影响 | 第30-31页 |
| 3.7 Myocardin基因与氧化损伤及Nrf2基因的关系 | 第31-37页 |
| 3.7.1 检测三组细胞Myocardin m RNA的变化 | 第31-32页 |
| 3.7.2 检测H_2O_2及丹参对大鼠心肌H9C2细胞中Nrf2蛋白和Myocardin蛋白的影响 | 第32页 |
| 3.7.3 过表达Myocardin基因抑制细胞增殖 | 第32-33页 |
| 3.7.4 下调Myocardin基因促进细胞增殖，而下调Nrf2基因抑制细胞增殖 | 第33页 |
| 3.7.5 过表达Myocardin基因引起Nrf2 mRNA表达下调 | 第33-34页 |
| 3.7.6 Myocardin基因下调引起Nrf2基因mRNA表达上调 | 第34-35页 |
| 3.7.7 过表达Myocardin基因引起Nrf2基因蛋白表达下调 | 第35-36页 |
| 3.7.8 Myocardin基因下调引起Nrf2基因蛋白表达上调 | 第36-37页 |
| 4、讨论 | 第37-41页 |
| 5、结论与展望 | 第41-42页 |
| 致谢 | 第42-43页 |
| 参考文献 | 第43-47页 |
| 文献综述 Keap1-Nrf2-ARE通路与氧化应激相关性疾病 | 第47-62页 |
| 一、Keap1-Nrf2-ARE通路的结构与功能特点 | 第47-50页 |
| 1、Keap1结构与功能 | 第47-48页 |
| 2、Nrf2结构与功能 | 第48页 |
| 3、ARE结构与功能 | 第48-49页 |
| 4、Keap1-Nrf2-ARE通路 | 第49-50页 |
| 二、Keap1-Nrf2-ARE通路与氧化应激相关性疾病的关系 | 第50-55页 |
| 1、脓毒症 | 第50页 |
| 2、心肌缺血再灌注损伤 | 第50页 |
| 3、肿瘤 | 第50-51页 |
| 4、神经系统病变 | 第51-52页 |
| 5、糖尿病 | 第52页 |
| 6、紫外线致皮肤氧化应激损伤 | 第52-53页 |
| 7、肝脏疾病 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 附录1 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第62-63页 |
| 附录2 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第63页 |
