| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文略缩词表 | 第9-10页 |
| 第1章 前言 | 第10-12页 |
| 第2章 实验材料 | 第12-15页 |
| 2.1 实验细胞和慢病毒 | 第12页 |
| 2.2 实验仪器 | 第12-13页 |
| 2.3 实验试剂 | 第13-14页 |
| 2.4 主要试剂配制 | 第14-15页 |
| 第3章 实验方法及步骤 | 第15-24页 |
| 实验技术路线图 | 第15-16页 |
| 3.1 THP-1 细胞的培养 | 第16页 |
| 3.1.1 THP-1 细胞的复苏及培养、传代 | 第16页 |
| 3.1.2 THP-1 细胞的培养 | 第16页 |
| 3.1.3 THP-1 细胞的传代 | 第16页 |
| 3.1.4 细胞冻存 | 第16页 |
| 3.2 PMA诱导分化THP-1 细胞为巨噬细胞 | 第16-17页 |
| 3.3 间歇缺氧处理 | 第17页 |
| 3.4 THP-1 细胞的RAGE、NF-KB、AGES与IH时间表达关系 | 第17-19页 |
| 3.4.1 Western Blot法验证IH与THP-1 细胞RAGE、NF-kB p65表达的时间关系 | 第17-18页 |
| 3.4.2 ELISA检测IH后上清液AGE产生与时间关系 | 第18-19页 |
| 3.5 SHRNA/RAGE慢病毒转染及稳定细胞株筛选 | 第19-22页 |
| 3.5.1 嘌呤霉素筛选试验 | 第19-20页 |
| 3.5.2 慢病毒感染THP-1 细胞及稳定细胞株筛选 | 第20页 |
| 3.5.3 qPCR检测各稳定细胞株中RAGE基因mRNA表达 | 第20-22页 |
| 3.5.4 Western blot检测各稳定细胞株中RAGE表达 | 第22页 |
| 3.6 实验分组 | 第22页 |
| 3.7 WESTERN BLOT检测RAGE在IH条件下对THP-1 细胞单核细胞趋化指标(MCP-1、CCR2)、巨噬细胞分化指标（CD14、CD68）的影响 | 第22-23页 |
| 3.8 油红O染色 | 第23页 |
| 3.9 统计学处理 | 第23-24页 |
| 第4章 实验结果 | 第24-33页 |
| 4.1 RAGE、NF-KB P65在间歇缺氧（IH）条件下的表达与时间的关系 | 第24-25页 |
| 4.2 AGES在间歇缺氧条件下的表达与时间的关系 | 第25页 |
| 4.3 PMA诱导分化THP-1 细胞为巨噬细胞 | 第25-26页 |
| 4.4 SHRNA/RAGE慢病毒转染及稳定细胞株筛选 | 第26-28页 |
| 4.4.1 WB验证慢病毒转染THP-1 细胞株RAGE蛋白表达情况 | 第26-27页 |
| 4.4.2 qPCR验证慢病毒转染THP-1 细胞株RAGE mRNA表达情况 | 第27-28页 |
| 4.5 WERSTERN-BLOT检测RAGE对间歇缺氧条件下的单核细胞趋化（MCP-1、CCR-2）、巨噬细胞分化（CD14、CD68）表达的影响 | 第28-31页 |
| 4.6 油红O染色RAGE在IH条件下对泡沫细胞生成的影响 | 第31-33页 |
| 第5章 讨论 | 第33-37页 |
| 第6章 结论 | 第37-38页 |
| 第7章 不足与展望 | 第38-39页 |
| 致谢 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-43页 |
| 综述 OSAS 患者持续气道正压通气与心血管事件的关系 | 第43-50页 |
| 参考文献 | 第47-50页 |
