| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 引言(绪论) | 第13-18页 |
| 1.1 胶质瘤及其治疗现状和相关研究 | 第13-14页 |
| 1.2 海洋来源的天然产物是新药开发的巨大资源 | 第14-15页 |
| 1.3 海洋来源的抗胶质瘤天然产物研究 | 第15-17页 |
| 1.3.1 海洋无脊椎动物来源的抗胶质瘤天然产物研究 | 第15页 |
| 1.3.2 海洋植物来源的抗胶质瘤天然产物研究 | 第15-16页 |
| 1.3.3 海洋微生物来源的抗胶质瘤天然产物研究 | 第16-17页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第17-18页 |
| 2 植物碱菀(Tripolium vulgare Nees)、海洋细菌Streptomyces sp.HZP-2216E和HZS的化学成分研究 | 第18-50页 |
| 2.1 实验仪器与材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.3 培养基 | 第19-20页 |
| 2.2 碱菀化学成分的研究及碱菀酯A类似物的合成和研究 | 第20-34页 |
| 2.2.1 碱菀的来源与鉴定 | 第20页 |
| 2.2.2 碱菀化学成分的提取与分离 | 第20-21页 |
| 2.2.3 碱菀化学成分的结构解析 | 第21-23页 |
| 2.2.4 碱菀酯A及它的类似物合成 | 第23-34页 |
| 2.3 菌株Streptomyces sp.HZP-2216E化学成分的研究 | 第34-47页 |
| 2.3.1 孔石莼(Ulva pertusa)的来源与鉴定 | 第34页 |
| 2.3.2 Streptomyces sp.HZP-2216E的分离与鉴定 | 第34-36页 |
| 2.3.3 Streptomyces sp.HZP-2216E的培养 | 第36-37页 |
| 2.3.4 Streptomyces sp.HZP-2216E化学成分的提取与分离 | 第37-38页 |
| 2.3.5 Streptomyces sp.HZP-2216E化学成分的结构解析 | 第38-47页 |
| 2.4 菌株HZS化学成分的研究 | 第47-50页 |
| 2.4.1 菌株HZS的获得 | 第47页 |
| 2.4.2 HZS的培养 | 第47页 |
| 2.4.3 HZS化学成分的提取与分离 | 第47-49页 |
| 2.4.4 HZS化学成分的结构解析 | 第49-50页 |
| 3 碱菀(Tripolium vulgare Nees)和Streptomyces sp.HZP-2216E的化学成分的抗胶质瘤活性研究 | 第50-61页 |
| 3.1 实验仪器与材料 | 第50-51页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第51页 |
| 3.2 主要试液的配制 | 第51-52页 |
| 3.2.1 细胞培养的试液 | 第51-52页 |
| 3.2.2 体外活性实验的试液 | 第52页 |
| 3.3 实验方法 | 第52-55页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第52-53页 |
| 3.3.2 SRB法测定化合物影响胶质瘤细胞增殖的体外抗肿瘤活性 | 第53页 |
| 3.3.3 DAPI/PI双染色荧光显微镜定性检测化合物对诱导胶质瘤细胞凋亡及坏死作用 | 第53-54页 |
| 3.3.4 Annexin V/PI双染色流式细胞术定量检测化合物诱导胶质瘤细胞凋亡作用 | 第54页 |
| 3.3.5 流式细胞术检测化合物对胶质瘤细胞周期的影响 | 第54-55页 |
| 3.4 碱菀和Streptomyces sp.HZP-2216E的化学成分对肿瘤特别是胶质瘤细胞增殖的抑制作用 | 第55-58页 |
| 3.4.1 SRB法测定碱菀的化学成分抑制胶质瘤细胞增殖的作用 | 第55-56页 |
| 3.4.2 SRB法测定碱菀酯A类似物在抑制胶质瘤细胞增殖的作用及其构效关系 | 第56-57页 |
| 3.4.3 SRB法测定Streptomyces sp.HZP-2216E的化学成分抑制胶质瘤细胞增殖的作用 | 第57-58页 |
| 3.5 碱菀的化学成分诱导胶质瘤细胞凋亡的研究 | 第58-59页 |
| 3.6 碱菀的化学成分碱菀酯A(1)对胶质瘤细胞周期的影响 | 第59-61页 |
| 4 总结 | 第61-63页 |
| 参考文献 | 第63-68页 |
| 作者简历 | 第68-70页 |
| 附录 | 第70-130页 |
