| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 第1章 绪论 | 第15-24页 |
| 1.1 南蛇藤素药理作用的研究现状 | 第15页 |
| 1.2 提高南蛇藤素水溶性的方法 | 第15-16页 |
| 1.3 MSNS作为新型纳米药物递送载体的研究 | 第16-20页 |
| 1.3.1 MSNs的合成 | 第16-18页 |
| 1.3.2 MSNs作为纳米药物递送体的优点 | 第18页 |
| 1.3.3 MSNs作为药物载体的发展进程 | 第18-20页 |
| 1.4 MSNS作为新型药物递送系统面临的挑战 | 第20-22页 |
| 1.5 本论文的研究目的及思路 | 第22-24页 |
| 第2章 实验部分 | 第24-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第24-25页 |
| 2.2 实验方法 | 第25-34页 |
| 2.2.1 MSNs的合成 | 第25页 |
| 2.2.2 MSNs形态和尺寸表征 | 第25-26页 |
| 2.2.3 荧光标记MSNs | 第26页 |
| 2.2.4 细胞对F-MSNs的内吞过程 | 第26页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测细胞内F-MSNs的荧光强度 | 第26-27页 |
| 2.2.6 MSNs载药和释药测定 | 第27-28页 |
| 2.2.7 透射电镜观察MSNs在细胞内的分布 | 第28页 |
| 2.2.8 CCk-8 检测细胞活性 | 第28-29页 |
| 2.2.9 流式细胞仪检测细胞周期 | 第29页 |
| 2.2.10 AnnexinV/PI检测细胞凋亡 | 第29页 |
| 2.2.11 western blot检测蛋白的表达情况 | 第29-30页 |
| 2.2.12 裸鼠皮下移植瘤模型建立 | 第30页 |
| 2.2.13 分组及给药治疗 | 第30页 |
| 2.2.14 组织学分析 | 第30-32页 |
| 2.2.15 Western blot检测肿瘤组织相关抗原的表达 | 第32页 |
| 2.2.16 ICP-AES检测MSNs在小鼠体内的分布 | 第32-33页 |
| 2.2.17 数据分析 | 第33-34页 |
| 第3章 结果 | 第34-50页 |
| 3.1 MSNS的合成 | 第34页 |
| 3.2 MSNS的表征 | 第34页 |
| 3.3 MSNS的粒径分析 | 第34-35页 |
| 3.4 MSNS载药量及药物释放率的测定 | 第35-36页 |
| 3.5 MSNs-celastrol体外抗肿瘤效果评价 | 第36-40页 |
| 3.5.1 MSNs-celastrol对HEp-2 细胞活力的影响 | 第36-37页 |
| 3.5.2 MSNs-celastrol对HEp-2 细胞细胞周期的影响 | 第37-38页 |
| 3.5.3 MSNs-celastrol诱导HEp-2 细胞凋亡 | 第38-39页 |
| 3.5.4 MSNs-celastrol诱导HEp-2 细胞自噬 | 第39-40页 |
| 3.6 MSNs-celastrol体外抗肿瘤作用机制的研究 | 第40-43页 |
| 3.6.1 细胞对MSNs的摄取 | 第40-42页 |
| 3.6.2 透射电镜观察MSNs在细胞的定位 | 第42页 |
| 3.6.3 内质网应激水平检测 | 第42-43页 |
| 3.7 MSNs-celastrol治疗裸鼠移植瘤的效果评价 | 第43-48页 |
| 3.7.1 荷瘤裸鼠肿瘤生长情况及体重变化的监测 | 第43-45页 |
| 3.7.2 荷瘤裸鼠肿瘤细胞的增殖和凋亡情况 | 第45-46页 |
| 3.7.3 荷瘤裸鼠肿瘤组织内质网应激水平检测 | 第46-48页 |
| 3.8 MSNS的组织相容性分析 | 第48页 |
| 3.9 MSNS在小鼠体内的分布 | 第48-50页 |
| 第4章 讨论 | 第50-56页 |
| 4.1 MSNs-celastrol能发挥更高效抗肿瘤作用 | 第51-53页 |
| 4.2 MSNs-celastrol降低南蛇藤素毒副作用 | 第53-54页 |
| 4.3 MSNS具有较好的生物相容性和生物可降解性 | 第54-56页 |
| 第5章 结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 作者简介及硕士期间研究成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
