| 摘要 | 第4-9页 |
| abstract | 第9-14页 |
| 中英文缩略词 | 第19-20页 |
| 引言 | 第20-24页 |
| 技术路线 | 第22-23页 |
| 创新点 | 第23-24页 |
| 第一部分 细胞实验情况下没食子酸对肺癌细胞A549和 95-D增殖和凋亡影响 | 第24-44页 |
| 1 前言 | 第24页 |
| 2 实验材料 | 第24-27页 |
| 2.1 细胞株 | 第24-25页 |
| 2.2 实验试剂 | 第25页 |
| 2.3 实验设备 | 第25-26页 |
| 2.4 实验溶剂配置 | 第26-27页 |
| 3 实验方法 | 第27-32页 |
| 3.1 实验分组及给药 | 第27页 |
| 3.2 95-D和A549细胞培养、复苏、传代、冷冻 | 第27-29页 |
| 3.3 CCK-8 法检测肿瘤细胞增殖情况 | 第29页 |
| 3.4 流式细胞实验检测细胞周期 | 第29-31页 |
| 3.5 流式细胞实验检测细胞凋亡 | 第31页 |
| 3.6 统计学分析 | 第31-32页 |
| 4 结果 | 第32-40页 |
| 4.1 没食子酸对A549和 95-D增殖的影响 | 第32-33页 |
| 4.2 没食子酸对A549和 95-D的细胞形态的影响 | 第33-34页 |
| 4.3 流式检测没食子酸对A549和 95-D细胞周期的影响 | 第34-37页 |
| 4.4 流式检测没食子酸对A549和 95-D细胞凋亡的影响 | 第37-40页 |
| 5 讨论 | 第40-42页 |
| 6 小结 | 第42-44页 |
| 第二部分 没食子酸对A549和 95-D体内成瘤能力的影响 | 第44-55页 |
| 1 前言 | 第44页 |
| 2 实验材料 | 第44-47页 |
| 2.1 实验动物和细胞株 | 第44-45页 |
| 2.2 实验试剂和实验 | 第45页 |
| 2.3 实验设备 | 第45-46页 |
| 2.8 实验溶剂配置 | 第46-47页 |
| 3 实验方法 | 第47-49页 |
| 3.1 实验分组及给药 | 第47页 |
| 3.2 动物模型的建立 | 第47页 |
| 3.3 计算动物模型形成的肿瘤体积、抑癌率 | 第47-48页 |
| 3.4 免疫组化检测肿瘤组织增殖指数 | 第48页 |
| 3.5 统计学分析 | 第48-49页 |
| 4 实验结果 | 第49-53页 |
| 4.1 没食子酸对A549和 95-D体内成瘤能力的影响 | 第49-51页 |
| 4.2 免疫组化检测肺癌组织中A549和 95-D的增殖情况 | 第51-53页 |
| 5 讨论 | 第53-54页 |
| 6 小结 | 第54-55页 |
| 第三部分 没食子酸诱导肺癌细胞凋亡的机制研究 | 第55-91页 |
| 1 前言 | 第55页 |
| 2 实验材料 | 第55-59页 |
| 2.1 细胞株 | 第55-56页 |
| 2.2 实验试剂 | 第56页 |
| 2.3 实验设备 | 第56-57页 |
| 2.4 溶液配制 | 第57-59页 |
| 3 实验方法 | 第59-68页 |
| 3.1 实验分组及给药 | 第59页 |
| 3.2 Western Blot检测NF-κβ 蛋白表达 | 第59-63页 |
| 3.3 Western Blot检测Caspase-3 蛋白表达 | 第63-64页 |
| 3.4 Western Blot检测AKT总蛋白表达及AKT磷酸化蛋白的表达 | 第64-65页 |
| 3.5 Western Blot检测p53蛋白表达 | 第65-66页 |
| 3.6 p53-home片段UAACGCUCCGAATUUGAC | 第66页 |
| 3.7 siRNA 转染过程 | 第66页 |
| 3.8 Western Blot检测抑制p53后蛋白表达 | 第66-67页 |
| 3.9 统计学分析 | 第67-68页 |
| 4 实验结果 | 第68-82页 |
| 4.1 没食子酸对A549和 95-D中NF-κβ 蛋白表达的作用 | 第68-70页 |
| 4.2 没食子酸对A549和 95-D中Caspase-3 蛋白表达的影响 | 第70-73页 |
| 4.3 没食子酸对A549和 95-D中AKT总蛋白表达及AKT磷酸化蛋白的表达的影响 | 第73-77页 |
| 4.4 没食子酸对A549和 95-D中p53蛋白表达的影响 | 第77-80页 |
| 4.5 敲低p53后观察没食子酸对A549和 95-D中Caspase3蛋白表达的影响 | 第80-82页 |
| 5 讨论 | 第82-90页 |
| 5.1 没食子酸能通过抑制肺癌细胞中NF-κβ 蛋白表达来促进肺癌细胞的凋亡 | 第82-84页 |
| 5.2 没食子酸能通过促进肺癌细胞中Caspase-3 蛋白表达来促进肺癌细胞的凋亡 | 第84-86页 |
| 5.3 没食子酸能通过降低肺癌细胞中AKT蛋白的磷酸化来促进肺癌细胞的凋亡 | 第86-89页 |
| 5.4 没食子酸能通过促进肺癌细胞中p53蛋白表达来促进肺癌细胞的凋亡 | 第89-90页 |
| 6 小结 | 第90-91页 |
| 全文结论 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-97页 |
| 综述 没食子酸在肿瘤中的应用研究进展及制备方法 | 第97-120页 |
| 1 没食子酸的药理特点研究 | 第97-103页 |
| 1.1 没食子酸的抗氧化作用 | 第97-99页 |
| 1.2 没食子酸诱导肿瘤细胞凋亡 | 第99-100页 |
| 1.3 没食子酸抑制肿瘤血管新生 | 第100-101页 |
| 1.4 没食子酸抑制肿瘤形成 | 第101页 |
| 1.5 没食子酸对肿瘤细胞的毒性研究 | 第101-102页 |
| 1.6 没食子酸的安全性特点 | 第102-103页 |
| 2 没食子酸诱导肿瘤细胞凋亡的机理研究现状 | 第103-108页 |
| 2.1 PI3K/AKT信号通路 | 第103-105页 |
| 2.2 NF-κβ 蛋白表达 | 第105-106页 |
| 2.3 抑癌基因p53的表达 | 第106-107页 |
| 2.4 Caspase的活化 | 第107-108页 |
| 3 没食子酸的制备和应用 | 第108-115页 |
| 3.1 没食子酸的制备方法 | 第108-113页 |
| 3.1.1 酸水解法 | 第108-109页 |
| 3.1.2 碱水解法 | 第109-110页 |
| 3.1.3 发酵法 | 第110-111页 |
| 3.1.4 酶法 | 第111-112页 |
| 3.1.5 各种没食子酸制备方法的比较 | 第112-113页 |
| 3.2 没食子酸的应用 | 第113-115页 |
| 3.2.1 用作抗氧化剂 | 第113页 |
| 3.2.2 用于有机合成和制备药物试剂 | 第113-114页 |
| 3.2.3 制备焦性没食子酸 | 第114页 |
| 3.2.4 生物学应用 | 第114页 |
| 3.2.5 其他应用 | 第114-115页 |
| 4 小结与展望 | 第115-116页 |
| 参考文献 | 第116-120页 |
| 个人简历 | 第120页 |
| 研究生期间发表的文章 | 第120-121页 |
| 致谢 | 第121页 |
