| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-37页 |
| 1.1 分类水稻叶色突变体 | 第13-14页 |
| 1.2 水稻叶色突变基因的分布 | 第14-21页 |
| 1.3 水稻叶色突变基因的分子机制 | 第21-34页 |
| 1.3.1 关于叶绿素合成与降解途径的基因 | 第21-26页 |
| 1.3.2 有关叶绿体发育基因 | 第26-31页 |
| 1.3.3 有关类胡萝卜素合成与降解途径基因 | 第31-32页 |
| 1.3.4 有关花青素合成与降解途径基因 | 第32页 |
| 1.3.5 其他途径的基因 | 第32-33页 |
| 1.3.6 未确定功能基因 | 第33-34页 |
| 1.4 水稻第3染色体上叶色相关突变基因 | 第34-36页 |
| 1.5 本文研究目的与意义 | 第36-37页 |
| 第二章 黄叶基因YGL7的图位克隆 | 第37-51页 |
| 2.1 试验材料 | 第37-38页 |
| 2.1.1 实验材料及种植条件 | 第37页 |
| 2.1.2 试剂 | 第37页 |
| 2.1.3 仪器设备 | 第37-38页 |
| 2.2 试验方法 | 第38-44页 |
| 2.2.1 水稻叶片DNA的提取 | 第38-39页 |
| 2.2.2 水稻叶片RNA的提取和反转录 | 第39-40页 |
| 2.2.3 分子标记分析程序 | 第40-41页 |
| 2.2.4 琼脂糖凝胶电泳 | 第41页 |
| 2.2.5 测序 | 第41-42页 |
| 2.2.6 cDNA克隆 | 第42-44页 |
| 2.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-51页 |
| 第三章 黄叶基因YGL7功能验证 | 第51-71页 |
| 3.1 试验材料 | 第51-52页 |
| 3.1.1 水稻材料 | 第51页 |
| 3.1.2 质粒和菌株 | 第51页 |
| 3.1.3 试剂 | 第51页 |
| 3.1.4 仪器设备 | 第51-52页 |
| 3.2 试验方法 | 第52-64页 |
| 3.2.1 YGL7功能互补载体构建和遗传转化 | 第52-60页 |
| 3.2.2 YGL7 RNAi载体构建和遗传转化 | 第60-61页 |
| 3.2.3 YGL7亚细胞定位 | 第61-63页 |
| 3.2.4 质粒提取 | 第63-64页 |
| 3.3 结果与分析 | 第64-69页 |
| 3.3.1 功能互补验证 | 第64-67页 |
| 3.3.2 RNA干扰 | 第67-68页 |
| 3.3.3 亚细胞定位 | 第68-69页 |
| 3.4 讨论 | 第69-71页 |
| 第四章 黄叶基因等位性鉴定 | 第71-76页 |
| 4.1 试验材料 | 第71-72页 |
| 4.1.1 实验材料及种植条件 | 第71页 |
| 4.1.2 试剂 | 第71页 |
| 4.1.3 仪器设备 | 第71-72页 |
| 4.2 试验方法 | 第72-73页 |
| 4.2.1 等位性测定杂交试验 | 第72页 |
| 4.2.2 杂交植株分子标记鉴定 | 第72-73页 |
| 4.3 结果与分析 | 第73-75页 |
| 4.3.1 等位测定分子标记基因型 | 第73-74页 |
| 4.3.2 等位材料表型 | 第74-75页 |
| 4.4 讨论 | 第75-76页 |
| 第五章 水稻光合色素测定 | 第76-82页 |
| 5.1 试验材料 | 第76页 |
| 5.1.1 实验材料及种植条件 | 第76页 |
| 5.1.2 试剂 | 第76页 |
| 5.1.3 仪器设备 | 第76页 |
| 5.2 试验方法 | 第76-77页 |
| 5.2.1 取样 | 第76页 |
| 5.2.2 叶片叶绿素和类胡萝卜素测定 | 第76-77页 |
| 5.2.3 叶绿素荧光参数测定 | 第77页 |
| 5.3 结果与分析 | 第77-80页 |
| 5.3.1 ygl7与野生型叶片光合色素分析 | 第77页 |
| 5.3.2 ygl7,chl1和ygl98叶片光合色素分析 | 第77-78页 |
| 5.3.3 杂交后代叶片光合色素分析 | 第78页 |
| 5.3.4 功能互补转基因苗光合色素分析 | 第78页 |
| 5.3.5 RNAi转基因苗光合色素分析 | 第78页 |
| 5.3.6 三个水稻黄绿叶突变体叶绿素荧光参数分析 | 第78-80页 |
| 5.4 讨论 | 第80-82页 |
| 第六章 黄叶基因的表达分析 | 第82-86页 |
| 6.1 试验材料 | 第82页 |
| 6.1.1 实验材料及种植条件 | 第82页 |
| 6.1.2 试剂 | 第82页 |
| 6.1.3 仪器设备 | 第82页 |
| 6.2 试验方法 | 第82-83页 |
| 6.2.1 引物 | 第82页 |
| 6.2.2 RNA提取 | 第82页 |
| 6.2.3 荧光定量PCR | 第82-83页 |
| 6.3 结果与分析 | 第83-85页 |
| 6.3.1 ygl7叶片qReal-time PCR分析 | 第83-84页 |
| 6.3.2 ygl7与ygl7-NIL叶片qReal-time PCR分析 | 第84-85页 |
| 6.3.3 RNAi转基因植株qReal-time PCR分析 | 第85页 |
| 6.4 讨论 | 第85-86页 |
| 第七章 总结及展望 | 第86-91页 |
| 7.1 ygl7是一个全生育期叶片呈黄绿色的突变体 | 第86页 |
| 7.2 ygl7回交后代叶色黄色 | 第86页 |
| 7.3 YGL7是镁螯合酶D亚基OSCHLD基因的一个等位基因 | 第86-87页 |
| 7.4 YGL7蛋白亚细胞定位需要存在一定浓度的Mg离子 | 第87页 |
| 7.5 YGL7RNAI为致死突变 | 第87页 |
| 7.6 YGL7影响多个叶绿素生物合成基因和光合作用有关基因的表达水平 | 第87-88页 |
| 7.7 ygl7叶片光合色素下降解释原因 | 第88页 |
| 7.8 ygl7,chl1和ygl98及其杂交后代表型 | 第88-89页 |
| 7.9 ygl7是一个理想的叶色标记 | 第89页 |
| 7.10 展望 | 第89-91页 |
| 参考文献 | 第91-105页 |
| 附录 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106-111页 |
| 作者简历 | 第111-112页 |
