| 中文摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 英文缩写词表 | 第18-19页 |
| 引言 | 第19-21页 |
| 第一篇 文献综述 | 第21-45页 |
| 第一章 甘露糖受体靶向传递系统的研究进展 | 第21-27页 |
| 1.1 甘露糖受体概况 | 第21-24页 |
| 1.1.1 甘露糖受体类型 | 第21-23页 |
| 1.1.2 甘露糖受体的多聚化和亲和力 | 第23-24页 |
| 1.2 甘露糖受体对抗原的摄取与递呈 | 第24-25页 |
| 1.3 甘露糖受体的免疫激活 | 第25页 |
| 1.4 甘露糖受体的靶向疫苗相关研究 | 第25-27页 |
| 第二章 生物降解材料简述 | 第27-33页 |
| 2.1 壳聚糖 | 第27-29页 |
| 2.1.1 壳聚糖基本性质 | 第27-28页 |
| 2.1.2 离子凝聚法制备壳聚糖微球 | 第28-29页 |
| 2.2 PLGA | 第29-31页 |
| 2.2.1 PLGA 基本性质 | 第29-30页 |
| 2.2.2 PLGA 疫苗相关研究 | 第30-31页 |
| 2.3 壳聚糖和 PLGA 的吸附静电作用 | 第31-33页 |
| 第三章 鼻黏膜免疫微球载体疫苗 | 第33-39页 |
| 3.1 鼻黏膜免疫的特点 | 第33-35页 |
| 3.1.1 鼻黏膜免疫的优点 | 第33-35页 |
| 3.1.2 鼻黏膜免疫的缺点 | 第35页 |
| 3.2 鼻黏膜免疫壳聚糖载体疫苗近期研究进展 | 第35-36页 |
| 3.3 黏膜免疫甘露糖修饰的壳聚糖载体疫苗近期研究进展 | 第36-39页 |
| 第四章 铜绿假单胞菌疫苗研究进展 | 第39-45页 |
| 4.1 脂多糖（LPS）和 O-多糖疫苗 | 第39-41页 |
| 4.2 粘液胞外多糖疫苗 | 第41页 |
| 4.3 鞭毛疫苗 | 第41-42页 |
| 4.4 菌毛疫苗 | 第42-43页 |
| 4.5 外膜蛋白疫苗 | 第43-45页 |
| 第二篇 研究内容 | 第45-145页 |
| 第一章 重组抗原铜绿假单胞菌外膜蛋白 OprF190–342-OprI21–83基因克隆、表达及生物信息学分析 | 第45-69页 |
| 1.1 材料 | 第45-47页 |
| 1.1.1 菌株和表达载体 | 第45-46页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第46页 |
| 1.1.3 仪器和设备 | 第46页 |
| 1.1.4 试剂的配制 | 第46-47页 |
| 1.2 方法 | 第47-54页 |
| 1.2.1 铜绿假单胞菌外膜蛋白 OprF190–342-OprI21–83基因克隆表达与鉴定 | 第47-53页 |
| 1.2.2 铜绿假单胞菌外膜蛋白 OprF190–342-OprI21–83核酸及蛋白序列的生物信息学分析 | 第53-54页 |
| 1.3 结果 | 第54-66页 |
| 1.3.1 铜绿假单胞菌外膜蛋白 OprF190–342-OprI21–83基因克隆表达与鉴定 | 第54-59页 |
| 1.3.2 铜绿假单胞菌外膜蛋白 OprF190–342-OprI21–83基因及蛋白序列生物信息学分析 | 第59-66页 |
| 1.4 讨论 | 第66-68页 |
| 1.5 小结 | 第68-69页 |
| 第二章 生物可降解多糖微球载体疫苗的制备及体外评价 | 第69-83页 |
| 2.1 材料 | 第70-71页 |
| 2.1.1 主要药品和试剂 | 第70页 |
| 2.1.2 仪器和设备 | 第70页 |
| 2.1.3 试剂的配制 | 第70-71页 |
| 2.2 方法 | 第71-74页 |
| 2.2.1 甘露糖修饰的壳聚糖衍生物的制备 | 第71页 |
| 2.2.2 壳聚糖和甘露糖修饰的壳聚糖微球载体疫苗的制备及体外评价 | 第71-72页 |
| 2.2.3 壳聚糖和甘露糖修饰的壳聚糖包衣的 PLGA 微球载体疫苗的制备及体外评价 | 第72-73页 |
| 2.2.4 数据的统计与分析 | 第73-74页 |
| 2.3 结果 | 第74-80页 |
| 2.3.1 甘露糖修饰的壳聚糖衍生物的获得 | 第74页 |
| 2.3.2 壳聚糖和甘露糖修饰的壳聚糖微球载体疫苗的表征 | 第74-77页 |
| 2.3.3 壳聚糖和甘露糖修饰的壳聚糖包衣的 PLGA 微球载体疫苗的表征 | 第77-80页 |
| 2.4 讨论 | 第80-81页 |
| 2.5 小结 | 第81-83页 |
| 第三章 生物可降解多糖微球载体疫苗在巨噬细胞中的摄取及其靶向性研究 | 第83-95页 |
| 3.1 材料 | 第83-85页 |
| 3.1.1 实验细胞株和动物 | 第83页 |
| 3.1.2 主要药品和试剂 | 第83-84页 |
| 3.1.3 仪器和设备 | 第84页 |
| 3.1.4 试剂的配制 | 第84-85页 |
| 3.2 方法 | 第85-88页 |
| 3.2.1 生物可降解多糖微球载体疫苗在巨噬细胞中的摄取 | 第85-86页 |
| 3.2.2 FI-MCS-MPs 和 FI-MCP-MPs 靶向巨噬细胞甘露糖受体研究 | 第86-88页 |
| 3.2.3 数据的统计与分析 | 第88页 |
| 3.3 结果 | 第88-92页 |
| 3.3.1 生物可降解多糖微球载体疫苗在巨噬细胞中的摄取 | 第88-90页 |
| 3.3.2 FI-MCS-MPs 和 FI-MCP-MPs 靶向巨噬细胞甘露糖受体研究 | 第90-92页 |
| 3.4 讨论 | 第92-94页 |
| 3.5 小结 | 第94-95页 |
| 第四章 巨噬细胞甘露糖受体介导甘露糖修饰的多糖微球载体疫苗促进 MAPK 和 NF-κB 信号通路的活化 | 第95-115页 |
| 4.1 材料 | 第95-97页 |
| 4.1.1 实验细胞株 | 第95-96页 |
| 4.1.2 主要药品和试剂 | 第96页 |
| 4.1.3 仪器和设备 | 第96页 |
| 4.1.4 试剂的配制 | 第96-97页 |
| 4.2 方法 | 第97-99页 |
| 4.2.1 小鼠巨噬细胞 RAW264.7 的培养 | 第97-98页 |
| 4.2.2 MTT 方法检测生物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠巨噬细胞 RAW264.7 的毒性作用 | 第98页 |
| 4.2.3 巨噬细胞分泌细胞因子的测定 | 第98页 |
| 4.2.4 信号通路细胞蛋白的提取及 Western blot 检测 | 第98-99页 |
| 4.2.5 信号通路蛋白 Western blot 检测 | 第99页 |
| 4.2.6 数据的统计与分析 | 第99页 |
| 4.3 结果 | 第99-111页 |
| 4.3.1 生物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠巨噬细胞 RAW264.7的毒性作用 | 第99-101页 |
| 4.3.2 生物可降解多糖微球载体疫苗对巨噬细胞细胞因子分泌的影响 | 第101-103页 |
| 4.3.3 生物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠巨噬细胞 RAW264.7NF-κB 信号转导通路的影响 | 第103-107页 |
| 4.3.4 物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠巨噬细胞 RAW264.7MAPK 信号转导通路的影响 | 第107-111页 |
| 4.4 讨论 | 第111-112页 |
| 4.5 小结 | 第112-115页 |
| 第五章 生物可降解多糖微球载体疫苗在小鼠中的黏膜免疫效果评价及安全性效力评价 | 第115-137页 |
| 5.1 材料 | 第116页 |
| 5.1.1 实验动物和菌株 | 第116页 |
| 5.1.2 主要药品和试剂 | 第116页 |
| 5.1.3 仪器和设备 | 第116页 |
| 5.1.4 试剂的配制 | 第116页 |
| 5.2 方法 | 第116-120页 |
| 5.2.1 实验动物免疫程序 | 第116-117页 |
| 5.2.2 黏膜和系统体液免疫应答的影响 | 第117-119页 |
| 5.2.3 黏膜和系统中 T 淋巴细胞亚群水平的影响 | 第119页 |
| 5.2.4 肺脏脾脏 T 淋巴细胞培养上清 IFN-γ和 IL-4 细胞因子测定 | 第119-120页 |
| 5.2.5 生物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠攻毒保护效果研究 | 第120页 |
| 5.2.6 数据的统计与分析 | 第120页 |
| 5.3 结果 | 第120-132页 |
| 5.3.1 黏膜和系统体液免疫应答的影响 | 第120-125页 |
| 5.3.2 黏膜和系统中 T 淋巴细胞亚群水平的影响 | 第125-130页 |
| 5.3.3 肺脏脾脏淋巴细胞培养上清 IFN-γ和 IL-4 细胞因子测定 | 第130-131页 |
| 5.3.4 生物可降解多糖微球载体疫苗对小鼠攻毒保护效果研究 | 第131-132页 |
| 5.4 讨论 | 第132-134页 |
| 5.5 小结 | 第134-137页 |
| 第六章 生物可降解多糖微球载体疫苗在水貂中的黏膜免疫效果评价及安全性效力评价 | 第137-145页 |
| 6.1 材料 | 第138页 |
| 6.1.1 实验动物和菌株 | 第138页 |
| 6.1.2 主要药品和试剂 | 第138页 |
| 6.1.3 仪器和设备 | 第138页 |
| 6.1.4 试剂的配制 | 第138页 |
| 6.2 方法 | 第138-140页 |
| 6.2.1 实验动物免疫程序 | 第138-139页 |
| 6.2.2 血清中 FI 特异性抗体的检测 | 第139页 |
| 6.2.3 生物可降解多糖微球载体疫苗对水貂攻毒保护效果研究 | 第139-140页 |
| 6.2.4 数据的统计与分析 | 第140页 |
| 6.3 结果 | 第140-142页 |
| 6.3.1 血清中 FI 特异性抗体的检测 | 第140-141页 |
| 6.3.2 生物可降解多糖微球载体疫苗对水貂攻毒保护效果研究 | 第141-142页 |
| 6.4 讨论 | 第142-144页 |
| 6.5 小结 | 第144-145页 |
| 结论 | 第145-146页 |
| 创新点 | 第146-147页 |
| 参考文献 | 第147-163页 |
| 导师简介 | 第163-164页 |
| 个人简介 | 第164-165页 |
| 在学期间所取得的科研成果 | 第165-166页 |
| 致谢 | 第166页 |
