| 摘要 | 第3-8页 |
| ABSTRACT | 第8-14页 |
| 前言 | 第17-25页 |
| 材料与方法 | 第25-40页 |
| 1 实验材料 | 第25-29页 |
| 1.1 主要仪器设备 | 第25页 |
| 1.2 主要试剂及配制 | 第25-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-39页 |
| 2.1 细胞培养 | 第29页 |
| 2.2 细胞模型建立 | 第29-30页 |
| 2.3 CCK-8法检测细胞活力 | 第30页 |
| 2.4 FOX法测定氧化应激环境下不同时间点细胞氧化应激的水平情况 | 第30-32页 |
| 2.5 ROS(Reactive Oxygen Species)检测 | 第32页 |
| 2.6 GSH(Glutathione)检测 | 第32-33页 |
| 2.7 Western blotting检测细胞内蛋白表达 | 第33-36页 |
| 2.8 免疫组化检测组织内蛋白表达 | 第36-39页 |
| 3 统计学处理 | 第39-40页 |
| 结果 | 第40-53页 |
| 1 不同浓度的过氧化氢对细胞的存活存在双向性作用 | 第40-41页 |
| 2 不同培养基对过氧化氢存在不同的消减作用 | 第41-43页 |
| 3 含细胞的完全培养基对过氧化氢存在不同的消减作用 | 第43-44页 |
| 4 HepG2细胞较L02细胞对过氧化氢诱导的氧化应激更为敏感 | 第44-45页 |
| 5 过氧化氢诱导的氧化应激导致HepG2细胞氧化损伤较L02细胞更为严重 | 第45-47页 |
| 6 过氧化氢诱导的氧化应激导致HepG2细胞抗氧化能力损伤较L02细胞更为严重 | 第47-48页 |
| 7 氧化应激对HepG2和L02细胞内Hsp90α、Hsp70、Hsp40的表达量影响存在差异 | 第48-50页 |
| 8 人肝癌组织中Hsp90α、Hsp70和Hsp40的表达情况 | 第50-53页 |
| 讨论 | 第53-59页 |
| 结论 | 第59-60页 |
| 全文总结 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 中英文缩略词表 | 第68-69页 |
| 硕士期间发表论文 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
