| 缩略语表 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-17页 |
| 1.1 马铃薯的休眠 | 第10页 |
| 1.2 脱落酸与马铃薯休眠 | 第10-12页 |
| 1.2.1 脱落酸的生理功能 | 第10-11页 |
| 1.2.2 脱落酸的生物合成和分解代谢 | 第11页 |
| 1.2.3 脱落酸与马铃薯休眠 | 第11-12页 |
| 1.2.4 脱落酸合成代谢中的 9-顺式-环氧类胡萝卜素双氧合酶 | 第12页 |
| 1.2.5 对ABA进行分子调控的研究 | 第12页 |
| 1.3 人工miRNA介导的基因沉默 | 第12-15页 |
| 1.3.1 基因沉默技术 | 第12-13页 |
| 1.3.2 植物miRNA的合成及其作用方式 | 第13-14页 |
| 1.3.3 植物人工miRNA介导的基因沉默 | 第14-15页 |
| 1.4 本研究的目的意义和技术路线 | 第15-17页 |
| 1.4.1 本研究的目的和意义 | 第15-16页 |
| 1.4.2 技术路线 | 第16-17页 |
| 第二章 马铃薯StNCED1基因的克隆及生物信息学分析 | 第17-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第17页 |
| 2.1.2 菌株和载体 | 第17页 |
| 2.1.3 试剂与工具酶 | 第17页 |
| 2.1.4 培养基 | 第17页 |
| 2.2 实验方法 | 第17-21页 |
| 2.2.1 马铃薯StNCED1基因的克隆 | 第17-21页 |
| 2.2.2 马铃薯StNCED1基因和蛋白的同源性分析 | 第21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-26页 |
| 2.3.1 马铃薯StNCED1基因的克隆 | 第21-23页 |
| 2.3.2 生物信息学分析 | 第23-26页 |
| 2.4 讨论 | 第26-27页 |
| 第三章 植物表达载体与人工microRNA干扰载体的构建 | 第27-38页 |
| 3.1 实验材料 | 第27页 |
| 3.1.1 质粒和菌株 | 第27页 |
| 3.1.2 试剂与工具酶 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-33页 |
| 3.2.1 StNCED1基因过表达载体的构建 | 第27-28页 |
| 3.2.2 人工microRNA干扰载体的构建 | 第28-33页 |
| 3.3 结果与分析 | 第33-36页 |
| 3.3.1 pBIC- StNCED1过表达载体的PCR扩增检测和酶切鉴定 | 第33-34页 |
| 3.3.2 人工microRNA干扰载体的构建 | 第34-36页 |
| 3.4 讨论 | 第36-38页 |
| 第四章 StNCED1基因转化马铃薯及脱落酸含量的测定 | 第38-48页 |
| 4.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.1 植物材料与菌株 | 第38页 |
| 4.1.2 酶与试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 培养基 | 第38页 |
| 4.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 4.2.1 农杆菌转化马铃薯 | 第38-39页 |
| 4.2.2 转化植株的获得与检测 | 第39-40页 |
| 4.2.3 转基因试管薯的qRT-PCR表达分析 | 第40-41页 |
| 4.2.4 转基因试管薯的脱落酸测定 | 第41-42页 |
| 4.3 结果与分析 | 第42-46页 |
| 4.3.1 转化植株的获得 | 第42页 |
| 4.3.2 转化植株的的PCR检测 | 第42-43页 |
| 4.3.3 qRT-PCR分析StNCED1基因的相对表达量 | 第43-44页 |
| 4.3.4 脱落酸的含量的测定与分析 | 第44-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-48页 |
| 第五章 结论 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 作者介绍 | 第57-58页 |
| 导师简介 | 第58-59页 |
