| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-29页 |
| 1.1 缺陷假单胞菌概况 | 第13页 |
| 1.2 植物致病真菌病害 | 第13-14页 |
| 1.3 微生物及其生物防治 | 第14-16页 |
| 1.3.1 植物根际促生细菌(PGPR) | 第14-15页 |
| 1.3.2 生物防治 | 第15-16页 |
| 1.4 假单胞菌假单胞菌产生的抗生素类型及其生防机制 | 第16-23页 |
| 1.4.1 假单胞菌产生的抗生素类型 | 第16-20页 |
| 1.4.1.1 吩嗪类 | 第17页 |
| 1.4.1.2 2,4-二乙酰藤黄酚 | 第17-18页 |
| 1.4.1.3 硝吡咯菌素 | 第18-19页 |
| 1.4.1.4 藤黄绿脓菌素 | 第19-20页 |
| 1.4.1.5 环状脂多肽 | 第20页 |
| 1.4.1.6 其它抗生素 | 第20页 |
| 1.4.2 假单胞菌产生抗生素的特点 | 第20-21页 |
| 1.4.3 抗生素的作用机制 | 第21-23页 |
| 1.4.3.1 作用于细胞膜 | 第21页 |
| 1.4.3.2 抑制细胞壁的合成 | 第21-22页 |
| 1.4.3.3 作用于蛋白质合成系统 | 第22页 |
| 1.4.3.4 抑制核酸的形成 | 第22页 |
| 1.4.3.5 干扰细胞能量代谢和电子传递体系 | 第22-23页 |
| 1.5 抗生素的提取分离方法 | 第23-27页 |
| 1.5.1 有效成分分离原理 | 第23-24页 |
| 1.5.2 发酵液的预处理 | 第24-25页 |
| 1.5.3 抗生素分离纯化技术 | 第25-26页 |
| 1.5.3.1 萃取法 | 第25页 |
| 1.5.3.2 色谱法 | 第25页 |
| 1.5.3.3 吸附法 | 第25-26页 |
| 1.5.4 纯化 | 第26-27页 |
| 1.6 论文设计思想 | 第27-29页 |
| 1.6.1 立体依据 | 第27-28页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第28-29页 |
| 第二章 材料与方法 | 第29-45页 |
| 2.1 供试材料 | 第29-31页 |
| 2.1.1 菌种 | 第29-30页 |
| 2.1.2 主要药品和试剂 | 第30页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第30-31页 |
| 2.1.4 主要培养基 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-45页 |
| 2.2.1 主要培养基的优化 | 第31-33页 |
| 2.2.1.1 菌株活化 | 第31页 |
| 2.2.1.2 菌株HD13对不同植物病原真菌抗菌活性的影响 | 第31页 |
| 2.2.1.3 初始培养基的筛选 | 第31-32页 |
| 2.2.1.4 最佳碳源的筛选 | 第32页 |
| 2.2.1.5 最佳氮源的筛选 | 第32页 |
| 2.2.1.6 无机盐对抑菌活性的影响 | 第32页 |
| 2.2.1.7 K_2HPO_4与抑菌活性 | 第32-33页 |
| 2.2.1.8 氯化钠与抑菌活性 | 第33页 |
| 2.2.1.9 发酵培养基主要成分的正交试验 | 第33页 |
| 2.2.2 培养条件的优化 | 第33-34页 |
| 2.2.2.1 培养基初始pH值的考察 | 第33页 |
| 2.2.2.2 接种量对抑菌活性的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.2.3 菌株HD13最佳吸收波长的测定 | 第34页 |
| 2.2.2.4 菌株HD13最佳发酵时间的测定 | 第34页 |
| 2.2.2.5 不同培养方式的考察 | 第34页 |
| 2.2.3 发酵液抑菌活性的稳定研究 | 第34-36页 |
| 2.2.3.1 分泌类型的检验 | 第34页 |
| 2.2.3.2 发酵液热稳定性的考察 | 第34-35页 |
| 2.2.3.3 pH对发酵液抑菌活性的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.4 不同硫酸铵饱和度对发酵液抑菌活性的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.5 紫外光对发酵液抑菌活性的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.6 储存时间对发酵液抑菌活性的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.7 不同浓度发酵液对抑菌活性的影响 | 第35页 |
| 2.2.3.8 发酵液OD值与生物量的关系 | 第35-36页 |
| 2.2.3.9 OD值与发酵产物抑菌活性的关系 | 第36页 |
| 2.2.4 活性组分的分离纯化 | 第36-41页 |
| 2.2.4.1 技术路线 | 第36-37页 |
| 2.2.4.2 发酵产物的累积 | 第37-38页 |
| 2.2.4.3 不同有机试萃取发酵液的活性 | 第38页 |
| 2.2.4.4 提取物效价的测定 | 第38页 |
| 2.2.4.5 硅胶柱层析分离 | 第38-39页 |
| 2.2.4.6 葡聚糖凝胶LH-20分离 | 第39-40页 |
| 2.2.4.7 活性组分的TLC层析 | 第40页 |
| 2.2.4.8 活性组分的HPLC检测 | 第40页 |
| 2.2.4.9 活性组分及其抑菌活性的初步分析 | 第40-41页 |
| 2.2.5 组分A抗植物病原真菌的活性初探 | 第41-44页 |
| 2.2.5.1 组分A对不同植物病原真菌的抑菌活性 | 第41页 |
| 2.2.5.2 组分A水稻纹枯病菌丝体形态的影响 | 第41页 |
| 2.2.5.3 水稻纹枯病菌丝体生长曲线的确定 | 第41页 |
| 2.2.5.4 组分A对水稻纹枯病菌丝体生长的影响 | 第41-42页 |
| 2.2.5.5 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞壁的影响 | 第42页 |
| 2.2.5.6 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞膜的影响 | 第42-43页 |
| 2.2.5.7 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞核DNA的影响 | 第43-44页 |
| 2.2.6 菌株HD13抑菌活性的稳定遗传 | 第44-45页 |
| 2.2.6.1 菌株HD13传代培养对抑菌活性的影响 | 第44页 |
| 2.2.6.2 菌株HD13传代培养对目标物质的影响 | 第44-45页 |
| 第三章 结果与分析 | 第45-74页 |
| 3.1 主要培养基的优化 | 第45-50页 |
| 3.1.1 菌株HD13对不同植物病原真菌抗菌活性的影响 | 第45页 |
| 3.1.2 初始培养基的筛选 | 第45-46页 |
| 3.1.3 最佳碳源的筛选 | 第46页 |
| 3.1.4 最佳氮源的筛选 | 第46-47页 |
| 3.1.5 无机盐对抑菌活性的影响 | 第47-48页 |
| 3.1.6 K_2HPO_4与抑菌活性 | 第48页 |
| 3.1.7 氯化钠与抑菌活性 | 第48-49页 |
| 3.1.8 发酵培养基主要成分的正交试验 | 第49-50页 |
| 3.2 发酵条件的优化 | 第50-54页 |
| 3.2.1 培养基初始pH值的考察 | 第50-51页 |
| 3.2.2 接种量对抑菌活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.2.3 菌株HD13最佳吸收波长的测定 | 第52页 |
| 3.2.4 菌株HD13最佳发酵时间的测定 | 第52-53页 |
| 3.2.5 不同培养方式的考察 | 第53-54页 |
| 3.3 发酵液抑菌活性的稳定研究 | 第54-60页 |
| 3.3.1 分泌类型的检验 | 第54页 |
| 3.3.2 发酵液热稳定性的考察 | 第54-55页 |
| 3.3.3 pH值对发酵液稳定性的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.4 不同饱和度硫酸铵对发酵液抑菌活性的影响 | 第56页 |
| 3.3.5 紫外光对发酵液抑菌活性的影响 | 第56-57页 |
| 3.3.6 储存时间对发酵液抑菌活性的影响 | 第57-58页 |
| 3.3.7 不同浓度发酵液对抑菌活性的影响 | 第58页 |
| 3.3.8 发酵液OD值与生物量和抑菌活性的关系 | 第58-60页 |
| 3.3.8.1 OD值与生物量的关系 | 第58-59页 |
| 3.3.8.2 OD值与抗菌活性的关系 | 第59-60页 |
| 3.4 活性组分的分离纯化 | 第60-65页 |
| 3.4.1 不同有机试剂萃取发酵物后的抑菌活性 | 第60-61页 |
| 3.4.2 提取物效价的测定 | 第61页 |
| 3.4.3 硅胶柱层析 | 第61-62页 |
| 3.4.4 分子筛层析 | 第62页 |
| 3.4.5 活性组分的分析 | 第62-65页 |
| 3.4.5.1 活性组分的处理 | 第62-63页 |
| 3.4.5.2 活性组分的TLC层析 | 第63页 |
| 3.4.5.3 活性组分的HPLC检测 | 第63-64页 |
| 3.4.5.4 活性组分的初步分析 | 第64-65页 |
| 3.4.5.5 组分的抑菌活性评价 | 第65页 |
| 3.5 组分A抗植物病原真菌的活性初探 | 第65-72页 |
| 3.5.1 组分A对不同植物病原真菌的抑菌活性 | 第65-66页 |
| 3.5.2 组分A水稻纹枯病菌丝体形态的影响 | 第66-67页 |
| 3.5.3 水稻纹枯病菌丝体生长曲线的确定 | 第67-68页 |
| 3.5.4 组分A对水稻纹枯病菌丝体生长的影响 | 第68页 |
| 3.5.5 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞壁的影响 | 第68-70页 |
| 3.5.6 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞膜的影响 | 第70-71页 |
| 3.5.7 组分A对水稻纹枯病菌丝体细胞核DNA的影响 | 第71-72页 |
| 3.6 菌株HD13抑菌活性的稳定遗传 | 第72-74页 |
| 3.6.1 菌株HD13传代培养对抑菌活性的影响 | 第72页 |
| 3.6.2 菌株HD13传代培养对目标物质的影响 | 第72-74页 |
| 第四章 小结与讨论 | 第74-79页 |
| 4.1 发酵条件的优化 | 第74-75页 |
| 4.2 发酵液抑菌活性的稳定研究 | 第75-76页 |
| 4.3 活性组分的分离纯化 | 第76页 |
| 4.4 组分A抗植物病原真菌的活性初探 | 第76-77页 |
| 4.5 菌株HD13抑菌活性的稳定遗传 | 第77-79页 |
| 第五章 结论与展望 | 第79-81页 |
| 5.1 结论 | 第79-80页 |
| 5.2 展望 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-90页 |
| 附录 | 第90-91页 |
| 致谢 | 第91-92页 |
