| 中文摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 前言 | 第18-20页 |
| 第一部分：清胰汤对大鼠重症急性胰腺炎肺损伤治疗作用的观察 | 第20-35页 |
| 材料与方法 | 第21-27页 |
| 1 实验材料 | 第21-23页 |
| 1.1 实验动物与饲料 | 第21页 |
| 1.2 实验仪器与设备 | 第21-22页 |
| 1.3 实验试剂 | 第22页 |
| 1.4 主要溶液的配制方法 | 第22页 |
| 1.5 清胰汤 | 第22-23页 |
| 2 实验方法 | 第23-26页 |
| 2.1 动物模型的制备 | 第23-24页 |
| 2.2 血清淀粉酶检测 | 第24页 |
| 2.3 肺和胰腺组织湿/干重比检测 | 第24页 |
| 2.4 肺胰组织的HE染色 | 第24-25页 |
| 2.5 TUNEL检测肺胰组织细胞凋亡 | 第25-26页 |
| 3 统计学分析 | 第26-27页 |
| 结果 | 第27-32页 |
| 1 不同处理对大鼠血清中淀粉酶含量的影响 | 第27-28页 |
| 2 不同处理对大鼠肺脏、胰腺组织湿/干重比影响 | 第28-29页 |
| 3 大鼠肺、胰腺组织HE染色病理观察结果 | 第29-30页 |
| 4 大鼠肺、胰腺组织中TUNEL法检测细胞凋亡 | 第30-32页 |
| 讨论 | 第32-34页 |
| 结论 | 第34-35页 |
| 第二部分：PBEF在大鼠重症急性胰腺炎肺损伤发病机制中的作用及清胰汤的影响 | 第35-62页 |
| （一）材料和方法 | 第37-52页 |
| 1 实验材料 | 第37-39页 |
| 1.1 实验仪器与设备 | 第37页 |
| 1.2 实验试剂与药品 | 第37-39页 |
| 1.3 实验动物分组 | 第39页 |
| 1.4 模型制备 | 第39页 |
| 1.5 标本采集和处理 | 第39页 |
| 2 实验方法 | 第39-51页 |
| 2.1 免疫组化检测肺、胰组织中PBEF的表达 | 第39-42页 |
| 2.2 PBEF的Real-time PCR检测 | 第42-44页 |
| 2.3 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第44-45页 |
| 2.4 Western blot检测PBEF及凋亡蛋白表达 | 第45-51页 |
| 3 统计学分析 | 第51-52页 |
| （二）实验结果 | 第52-58页 |
| 1 免疫组化法检测大鼠肺、胰腺组织PBEF的表达 | 第52-53页 |
| 2 Real-time PCR检测 | 第53-54页 |
| 3 Western blot检测 | 第54-55页 |
| 4 外周血PMN细胞凋亡检测 | 第55-56页 |
| 5 凋亡相关蛋白表达检测 | 第56-58页 |
| （三）讨论 | 第58-61页 |
| （四）结论 | 第61-62页 |
| 第三部分：大黄素对PMN细胞凋亡的影响 | 第62-74页 |
| （一）材料和方法 | 第64-66页 |
| 1 实验材料 | 第64页 |
| 1.1 实验仪器与设备 | 第64页 |
| 1.2 实验试剂与药品 | 第64页 |
| 2 实验方法 | 第64-65页 |
| 2.1 中性粒细胞的分离与培养 | 第64-65页 |
| 2.2 流式细胞仪检测细胞凋亡 | 第65页 |
| 2.3 Western blot检测凋亡相关蛋白表达 | 第65页 |
| 3 统计学分析 | 第65-66页 |
| （二）实验结果 | 第66-70页 |
| 1 细胞培养 | 第66页 |
| 2 细胞凋亡检测 | 第66-67页 |
| 3 凋亡相关蛋白表达检测 | 第67-70页 |
| （三）讨论 | 第70-73页 |
| （四）结论 | 第73-74页 |
| 参考文献 | 第74-82页 |
| 综述 大黄素对重症急性胰腺炎治疗作用的研究进展 | 第82-101页 |
| 参考文献 | 第90-101页 |
| 附录 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102-103页 |
| 缩略词表 | 第103-106页 |
