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骨髓间充质干细胞影响多发性骨髓瘤细胞系的干性及其机制探讨

中文摘要第4-6页
Abstract第6-8页
缩略语/符号说明第12-13页
前言第13-17页
    研究现状、成果第13-16页
    研究目的、方法第16-17页
一、BM-MSCs对骨髓瘤细胞系干性的影响第17-36页
    1.1 对象和方法第17-20页
        1.1.1 细胞系第17页
        1.1.2 主要实验试剂第17-18页
        1.1.3 主要实验仪器第18-19页
        1.1.4 主要试剂配制第19-20页
    1.2 实验方法第20-28页
        1.2.1 细胞复苏、培养、传代与冻存第20-21页
        1.2.2 骨髓间充质干细胞的分离及培养第21-22页
        1.2.3 多发性骨髓瘤细胞与骨髓间充质干细胞共培养第22页
        1.2.4 RNA的提取第22-23页
        1.2.5 反转录(RT)和实时定量PCR(Real Time PCR)第23-24页
        1.2.6 蛋白的提取第24-25页
        1.2.7 Western Blot实验第25-27页
        1.2.8 软琼脂克隆形成实验第27页
        1.2.9 统计学分析第27-28页
    1.3 结果第28-33页
        1.3.1 正常人骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)的形态第28页
        1.3.2 正常人骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266干性相关基因表达第28-29页
        1.3.3 正常人骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266干性相关蛋白表达第29-30页
        1.3.4 正常人骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266克隆形成率的增加第30-31页
        1.3.5 MM患者骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266干性相关基因表达第31-32页
        1.3.6 MM患者骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266干性相关蛋白表达第32页
        1.3.7 MM患者骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)促进LP-1和U266克隆形成率的增加第32-33页
    1.4 讨论第33-35页
    1.5 小结第35-36页
二、BTK在BM-MSCs促进骨髓瘤细胞干性中的机制探讨第36-51页
    2.1 材料、试剂与仪器第36-38页
        2.1.1 细胞系第36页
        2.1.2 主要实验试剂及其配制第36-37页
        2.1.3 主要实验仪器第37-38页
    2.2 实验方法第38-45页
        2.2.1 细胞复苏、培养、传代与冻存第38页
        2.2.2 RT-PCR 检测多发性骨髓瘤细胞株LP-1和U266单培养、与BM-MSCs共培养(直接接触组及Transwell组)中BTK表达的差异第38-40页
        2.2.3 RT-PCR检测加入与不加BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组干性相关基因的表达第40-41页
        2.2.4 Western blot检测加入与不加BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组干性相关蛋白的表达第41-43页
        2.2.5 软琼脂克隆形成实验检测加入与不加BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组克隆形成能力的差异第43-44页
        2.2.6 统计学分析第44-45页
    2.3 结果第45-48页
        2.3.1 RT-PCR结果示多发性骨髓瘤细胞株LP-1和U266与骨髓瘤患者的BM-MSCs共培养后BTK表达上调第45页
        2.3.2 RT-PCR结果显示加入BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组干性相关基因的表达下调第45-46页
        2.3.3 Western Blot结果显示加入BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组干性相关蛋白表达下调第46-47页
        2.3.4 软琼脂克隆形成实验结果显示加入BTK抑制剂后直接接触组、Transwell组克隆形成能力下降第47-48页
    2.4 讨论第48-50页
    2.5 小结第50-51页
结论第51-52页
参考文献第52-57页
发表论文和参加科研情况说明第57-58页
附录第58-61页
综述 多发性骨髓瘤与间充质干细胞是“敌”是“友”第61-73页
    综述参考文献第68-73页
致谢第73-75页
个人简历第75页

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