| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-21页 |
| 1.1 我国贝类养殖状况 | 第14-15页 |
| 1.2 杂种优势 | 第15-16页 |
| 1.2.1 杂种优势遗传机理 | 第15页 |
| 1.2.2 杂种优势的预测 | 第15页 |
| 1.2.3 海洋贝类杂种优势的利用现状 | 第15-16页 |
| 1.2.4 杂种优势利用存在的问题和解决途径 | 第16页 |
| 1.3 分子遗传鉴定技术 | 第16-21页 |
| 1.3.1 第1代分子标记 | 第17-18页 |
| 1.3.2 第2代分子标记 | 第18页 |
| 1.3.3 第3代分子标记 | 第18-21页 |
| 第二章 虾夷扇贝EST微卫星标记初步筛选 | 第21-32页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-25页 |
| 2.1.1 虾夷扇贝来源 | 第22页 |
| 2.1.2 微卫星序列的获得 | 第22页 |
| 2.1.3 模板DNA的制备 | 第22页 |
| 2.1.4 PCR扩增与电泳检验 | 第22-23页 |
| 2.1.5 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第23-25页 |
| 2.1.6 数据统计与分析 | 第25页 |
| 2.2 结果 | 第25-30页 |
| 2.2.1 EST-SSR筛选结果 | 第25-29页 |
| 2.2.2 虾夷扇贝EST-SSR的群体遗传多样性分析 | 第29-30页 |
| 2.3 讨论 | 第30-31页 |
| 2.4 小结 | 第31-32页 |
| 第三章 虾夷扇贝EST-SSR标记在栉孔扇贝中的通用性研究 | 第32-42页 |
| 3.1 材料和方法 | 第33-34页 |
| 3.1.1 材料 | 第34页 |
| 3.1.2 引物的设计与合成 | 第34页 |
| 3.1.3 模板DNA的制备 | 第34页 |
| 3.1.4 PCR扩增与电泳检验 | 第34页 |
| 3.1.5 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第34页 |
| 3.1.6 数据统计与分析 | 第34页 |
| 3.2 结果 | 第34-40页 |
| 3.2.1 扇贝基因组DNA提取结果 | 第34页 |
| 3.2.2 扇贝属间通用性引物的筛选 | 第34-36页 |
| 3.2.3 群体遗传结构 | 第36-38页 |
| 3.2.4 扇贝群体遗传多样性分析 | 第38页 |
| 3.2.5 扇贝群体遗传变异性分析 | 第38-40页 |
| 3.3 讨论 | 第40-41页 |
| 3.3.1 虾夷扇贝EST-SSR位点的通用性研究 | 第40页 |
| 3.3.2 虾夷扇贝EST-SSR位点的开发及群体遗传多样性分析 | 第40-41页 |
| 3.4 小结 | 第41-42页 |
| 第四章 栉孔扇贝（♀）×虾夷扇贝（♂）杂交后代的亲权鉴定 | 第42-55页 |
| 4.1 材料与方法 | 第42-44页 |
| 4.1.1 杂交育种方法 | 第43页 |
| 4.1.2 扇贝来源 | 第43页 |
| 4.1.3 引物的设计与合成 | 第43页 |
| 4.1.4 模板DNA的制备 | 第43页 |
| 4.1.5 PCR扩增与电泳检验 | 第43-44页 |
| 4.1.6 聚丙烯酰氨凝胶电泳 | 第44页 |
| 4.1.7 数据统计与分析 | 第44页 |
| 4.2 结果 | 第44-52页 |
| 4.2.1 通用性引物筛选 | 第44页 |
| 4.2.2 群体遗传结构 | 第44-48页 |
| 4.2.3 群体遗传多样性分析 | 第48-50页 |
| 4.2.4 亲子鉴定 | 第50-52页 |
| 4.3 讨论 | 第52-54页 |
| 4.3.1 杂交组的遗传多样性分析 | 第52-53页 |
| 4.3.2 亲子鉴定的分析 | 第53-54页 |
| 4.4 小结 | 第54-55页 |
| 总结 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-69页 |
| 附录 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
