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CYP38蛋白中酸性Loop链对其结构和功能的影响

摘要第3-5页
abstract第5-7页
第一章 引言第11-21页
    1.1 亲免蛋白的性质与特点第11-13页
    1.2 亲免蛋白在植物中的研究进展第13-17页
    1.3 CYP38在光合作用中的研究进展第17-19页
    1.4 本工作的研究目的意义和内容第19-21页
        1.4.1 研究目的、意义第19页
        1.4.2 研究内容第19-21页
第二章 pGEX4T.3-CYP38点突变以及pET28a-AtCtpA原核表达载体的构建第21-37页
    2.1 材料与试剂第21-22页
        2.1.1 材料第21页
        2.1.2 试剂第21-22页
    2.2 方法第22-33页
        2.2.1 pGEX4T.3-CYP38载体的构建第22-27页
            2.2.1.1 目的片段的制备第22-24页
            2.2.1.2 载体的制备第24-25页
            2.2.1.3 pGEX4T.3-CYP38载体的构建第25-27页
        2.2.2 构建pGEX4T.3-CYP38点突变第27-31页
        2.2.3 pET28a-AtCtpA载体的构建第31-33页
            2.2.3.1 目的基因的扩增第31-32页
            2.2.3.2 pET28a质粒DNA的提取第32页
            2.2.3.3 目的基因与pET28a质粒DNA的双酶切第32-33页
            2.2.3.4 pET28a-AtCtpA载体的构建第33页
    2.3 结果与讨论第33-37页
        2.3.1 pGEX4T.3-CYP38重组质粒的构建第33-34页
        2.3.2 pGEX4T.3-CYP38点突变重组质粒的测序结果第34-35页
        2.3.3 pET28a-AtCtpA大肠杆菌DH5α菌落的PCR鉴定第35-36页
        2.3.4 小结第36-37页
第三章 CYP38各突变体与AtCtpA体外相互作用的研究第37-49页
    3.1 材料与试剂第37-38页
        3.1.1 材料第37页
        3.1.2 试剂第37-38页
    3.2 方法第38-43页
        3.2.1 GST蛋白及各种GST-CYP38融合蛋白的表达及纯化第38-41页
            3.2.1.1 蛋白表达第38-39页
            3.2.1.2 利用Glutathione Sepharose 4B微珠纯化蛋白第39-41页
        3.2.2 融合蛋白His-AtCtpA的表达与纯化第41页
            3.2.2.1 蛋白表达第41页
            3.2.2.2 利用Ni-NTAAgarose纯化蛋白第41页
        3.2.3 Pull-down实验第41-43页
            3.2.3.1 原理第41-42页
            3.2.3.2 Pull-down第42页
            3.2.3.3 Western blotting检测第42-43页
    3.3 结果与讨论第43-49页
        3.3.1 GST tag融合蛋白及GST蛋白纯化结果第43-44页
        3.3.2 GST及GST融合蛋白浓度测定第44-45页
        3.3.3 His tag融合蛋白纯化结果第45页
        3.3.4 Pull-down结果第45-47页
        3.3.5 讨论第47-49页
第四章 CYP38突变体与AtCtpA在酵母体内相互作用的研究第49-60页
    4.1 材料与试剂第49-50页
        4.1.1 材料第49页
        4.1.2 试剂第49-50页
    4.2 方法第50-54页
        4.2.1 诱饵质粒的构建第50-52页
            4.2.1.1 目的基因的扩增第50-51页
            4.2.1.2 pGBKT7质粒DNA的提取第51页
            4.2.1.3 目的基因与pGBKT7质粒DNA的双酶切第51-52页
            4.2.1.4 诱饵质粒的构建第52页
        4.2.2 猎物质粒的构建第52-53页
            4.2.2.1 目的基因的扩增与双酶切第52页
            4.2.2.2 pGADT7质粒DNA的提取第52-53页
            4.2.2.3 pGADT7质粒DNA的双酶切第53页
            4.2.2.4 猎物质粒的构建第53页
        4.2.3 酵母双杂交第53-54页
        4.2.4 验证实验第54页
    4.3 结果与讨论第54-60页
        4.3.1 诱饵质粒构建结果第54-55页
        4.3.2 猎物质粒的构建结果第55页
        4.3.3 酵母双杂交结果第55-58页
        4.3.4 验证实验结果第58-60页
结论第60-62页
参考文献第62-67页
附录:英文缩写第67-68页
致谢第68页

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