| 中英文对照 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1.文献综述 | 第11-27页 |
| 1.1 中枢神经系统自身免疫性疾病简介 | 第11-16页 |
| 1.1.1 人类中枢神经系统自身免疫性疾病 | 第12-13页 |
| 1.1.2 相关动物模型 | 第13-16页 |
| 1.2 局部的炎性微环境 | 第16-23页 |
| 1.2.1 浸润的炎性细胞 | 第16-21页 |
| 1.2.2 局部的神经细胞 | 第21-23页 |
| 1.3 炎性微环境中各因子对疾病的影响 | 第23-26页 |
| 1.3.1 神经营养因子 | 第24页 |
| 1.3.2 促炎性细胞因子 | 第24-25页 |
| 1.3.3 抗炎性细胞因子 | 第25页 |
| 1.3.4 双重作用的细胞因子 | 第25-26页 |
| 1.4 本课题思路 | 第26-27页 |
| 2.前言 | 第27-28页 |
| 3.大鼠单向型EAU疾病过程中IL-17神经保护作用研究 | 第28-44页 |
| 3.1 实验材料与方法 | 第28-33页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第28-29页 |
| 3.1.2 实验器材及设备 | 第29页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.2 结果 | 第33-41页 |
| 3.2.1 急性-单向型EAU病程中呈现含高水平IL-17的微环境 | 第33-35页 |
| 3.2.2 视网膜内浸润的炎性细胞和局部神经细胞同时表达IL-17 | 第35-38页 |
| 3.2.3 发病后期干扰IL-17对疾病自限性病程恢复的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.4 疾病恢复期干扰IL-17导致视网膜内的神经细胞显著凋亡 | 第39-41页 |
| 3.3 讨论 | 第41-44页 |
| 4.IL-17神经保护作用机制的体外实验研究 | 第44-76页 |
| 4.1 实验材料与方法 | 第44-53页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第44-46页 |
| 4.1.2 实验器材及设备 | 第46页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第46-53页 |
| 4.2 结果 | 第53-73页 |
| 4.2.1 星形胶质细胞保护神经元抵抗炎性环境诱导的细胞凋亡 | 第53-62页 |
| 4.2.2 IL-17神经保护作用的相关机制 | 第62-65页 |
| 4.2.3 含高水平IL-17的炎性上清促进星形胶质细胞产生IL-17 | 第65-70页 |
| 4.2.4 星形胶质细胞通过JAK/STAT信号通路的活化产生IL-17 | 第70-73页 |
| 4.3 讨论 | 第73-76页 |
| 5.结论 | 第76-77页 |
| 6.致谢 | 第77-78页 |
| 7.参考文献 | 第78-89页 |
| 8.个人简历 | 第89-90页 |
