| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 缩略词表 | 第15-18页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-37页 |
| 1 抗坏血酸在植物体内的生物合成代谢及调控途径 | 第19-24页 |
| 1.1 抗坏血酸生物合成途径 | 第19-22页 |
| 1.2 抗坏血酸在植物体内的调控作用 | 第22-23页 |
| 1.3 抗坏血酸相关基因的调控机制 | 第23-24页 |
| 2 开花途径及开花基因在体内的调控途径 | 第24-28页 |
| 2.1 成花调控途径 | 第24-26页 |
| 2.2 花形态建成模式 | 第26-27页 |
| 2.3 果胶的代谢过程对花粉发育和抗坏血酸合成的重要作用 | 第27-28页 |
| 3 十字花科重要植物基因组发展概况 | 第28-31页 |
| 3.1 白菜基因组研究进展 | 第29-30页 |
| 3.2 甘蓝基因组的研究进展 | 第30页 |
| 3.3 甘蓝型油菜基因组的研究进展 | 第30-31页 |
| 3.4 比较基因组学的研究方案 | 第31页 |
| 4 基因剂量假说及复制基因类型 | 第31-34页 |
| 4.1 复制基因的产生 | 第32-33页 |
| 4.2 复制基因的分化特征 | 第33-34页 |
| 5 分子标记技术发展概况 | 第34-37页 |
| 5.1 分子标记技术的重要发展阶段 | 第34-35页 |
| 5.2 连锁图谱构建技术的发展 | 第35-37页 |
| 第二章 抗坏血酸相关基因在白菜基因组三倍化过程中的进化保守性研究 | 第37-57页 |
| 1 引言 | 第38-39页 |
| 2 材料与方法 | 第39-44页 |
| 2.1 材料 | 第39页 |
| 2.2 试验方法 | 第39-44页 |
| 3 结果与分析 | 第44-54页 |
| 3.1 AsA相关基因在拟南芥和白菜基因组中的鉴定 | 第44-46页 |
| 3.2 AsA相关基因在白菜基因组中的保留情况 | 第46页 |
| 3.3 AsA共线基因碱基同义突变频率(Ks)的计算 | 第46-47页 |
| 3.4 AsA转运基因的进化历程 | 第47-49页 |
| 3.5 白菜和拟南芥AsA转运基因结构和功能的鉴定 | 第49-50页 |
| 3.6 L-半乳糖生物合成途径的复制和分化 | 第50-51页 |
| 3.7 白菜和拟南芥AsA代谢循环途径相关基因特征和表达分析 | 第51-52页 |
| 3.8 白菜和拟南芥AsA相关基因功能和表达分析 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-57页 |
| 第三章 抗坏血酸L-半乳糖途径基因在白菜中的保守性及功能分化性研究 | 第57-75页 |
| 1 引言 | 第58-59页 |
| 2 材料与方法 | 第59-63页 |
| 2.1 材料 | 第59-60页 |
| 2.2 试验方法 | 第60-63页 |
| 3 结果与分析 | 第63-72页 |
| 3.1 芸薹属植物中L-半乳糖基因的复制和分化 | 第63-65页 |
| 3.2 L-半乳糖基因的特征分析 | 第65-67页 |
| 3.3 在不结球白菜中FLC基因调控VTC5基因的表达 | 第67-68页 |
| 3.4 光照下L-半乳糖途径基因的表达模式分析 | 第68-70页 |
| 3.5 四种逆境胁迫对L-半乳糖途径基因的影响 | 第70-72页 |
| 4 讨论 | 第72-75页 |
| 第四章 AKR基因分子进化分析及在不结球白菜克隆鉴定 | 第75-97页 |
| 1 引言 | 第76-77页 |
| 2 材料与方法 | 第77-82页 |
| 2.1 材料 | 第77页 |
| 2.2 试验方法 | 第77-82页 |
| 3 结果与分析 | 第82-95页 |
| 3.1 ARK基因家族分组鉴定 | 第82-84页 |
| 3.2 ARK基因家族进化及特征分析 | 第84-85页 |
| 3.3 植物进化过程中AKRs分支选择压力的鉴定 | 第85-86页 |
| 3.4 AKRs在白菜基因组三倍化过程中的分化特征 | 第86-88页 |
| 3.5 白菜和拟南芥AKRs基因结构特征和组织表达分析 | 第88-91页 |
| 3.6 A组AKR基因在不结球白菜中克隆分析 | 第91-92页 |
| 3.7 逆境对克隆得到的BrcAKR基因表达趋势与AsA含量相关性的影响 | 第92-95页 |
| 4 讨论 | 第95-97页 |
| 第五章 白菜PG和PME基因综合比较分析揭示了其不同进化模式 | 第97-117页 |
| 1 引言 | 第98-99页 |
| 2 材料与方法 | 第99-102页 |
| 2.1 材料 | 第99-100页 |
| 2.2 试验方法 | 第100-102页 |
| 3 结果与分析 | 第102-114页 |
| 3.1 白菜基因组三倍化过程中PG和PME基因拷贝数的变异分析 | 第102-103页 |
| 3.2 白菜基因组中PG和PME复制类型及与拟南芥同源基因Ks值分析 | 第103-104页 |
| 3.3 白菜基因组中PG和PME基因特征分析 | 第104-106页 |
| 3.4 PME基因在植物中的进化模式 | 第106-109页 |
| 3.5 PG基因在植物中的进化历程 | 第109-111页 |
| 3.6 PG和PME基因在分化过程中的选择压力 | 第111-113页 |
| 3.7 PG和PME基因拟南芥和白菜中组织表达分化比较分析 | 第113-114页 |
| 4 讨论 | 第114-117页 |
| 第六章 综合比较白菜开花途径相关基因并分析CO-like基因的进化模式 | 第117-139页 |
| 1 引言 | 第118-120页 |
| 2 材料与方法 | 第120-122页 |
| 2.1 材料 | 第120页 |
| 2.2 试验方法 | 第120-122页 |
| 3 结果与分析 | 第122-137页 |
| 3.1 单双子叶中开花相关基因鉴定分析 | 第122-125页 |
| 3.2 白菜COL基因综合比较分析 | 第125-127页 |
| 3.3 COL基因在植物中的起源和进化历程 | 第127-132页 |
| 3.4 十字花科和禾本科植物中CO基因综合比较分析 | 第132-133页 |
| 3.5 生物钟途径调控基因的表达模式分析 | 第133-137页 |
| 4 讨论 | 第137-139页 |
| 第七章 白菜MADS-box基因家族全基因组分析鉴定 | 第139-159页 |
| 1 引言 | 第140-142页 |
| 2 材料与方法 | 第142-146页 |
| 2.1 材料 | 第142页 |
| 2.2 试验方法 | 第142-146页 |
| 3 结果与分析 | 第146-156页 |
| 3.1 MADS基因鉴定及比较分析 | 第146-148页 |
| 3.2 MADS基因在白菜基因组中不同保留程度分析 | 第148页 |
| 3.3 白菜MADS基因系统进化比较分析 | 第148-149页 |
| 3.4 白菜MADS基因保守结构域和基因结构分析 | 第149-150页 |
| 3.5 MADS直系同源基因对、染色体分布以及重复基因分析 | 第150-153页 |
| 3.6 白菜MADS基因组织表达分析 | 第153-154页 |
| 3.7 白菜MADS基因在逆境下表达分析 | 第154-156页 |
| 4 讨论 | 第156-159页 |
| 第八章 不结球白菜高密度遗传图谱构建及AsA和开花性状的QTL定位分析 | 第159-173页 |
| 1 引言 | 第160-161页 |
| 2 材料与方法 | 第161-164页 |
| 2.1 材料 | 第161页 |
| 2.2 试验方法 | 第161-164页 |
| 3 结果与分析 | 第164-169页 |
| 3.1 全基因组重测序和SNP位点鉴定 | 第164-165页 |
| 3.2 连锁图谱的构建 | 第165-166页 |
| 3.3 连锁图谱与物理图谱的共线关系以及SNP位点注释 | 第166-167页 |
| 3.4 AsA含量和开花时间的调查 | 第167-168页 |
| 3.5 QTL定位分析 | 第168-169页 |
| 4 讨论 | 第169-173页 |
| 全文结论 | 第173-175页 |
| 创新点 | 第175-177页 |
| 参考文献 | 第177-197页 |
| 论文发表情况 | 第197-199页 |
| 致谢 | 第199页 |
