| 符号说明 | 第1-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| 1 材料和方法 | 第13-21页 |
| ·材料 | 第13-15页 |
| ·主要试剂 | 第13页 |
| ·主要试剂配制 | 第13-14页 |
| ·主要仪器设备 | 第14-15页 |
| ·实验方法 | 第15-21页 |
| ·健康人外周血T 细胞的分离 | 第15-16页 |
| ·T 细胞的培养、活化及PD-1 检测 | 第16页 |
| ·PEGFP-N1-CD274-GFP 质粒的构建 | 第16-17页 |
| ·质粒扩增 | 第17-18页 |
| ·PD-L1~+质粒转染人子宫颈癌Hela 细胞 | 第18-19页 |
| ·PD-L1~+质粒转染人子宫颈癌 Hela 细胞后免疫组织化学染色检测PD-L1 表达 | 第19页 |
| ·PD-L1~+ Hela 细胞与健康人外周血活化T 细胞混合培养 | 第19-20页 |
| ·MTT 检测T 细胞增殖 | 第20页 |
| ·流式细胞术检测T 细胞凋亡 | 第20页 |
| ·ELISA 检测T 细胞培养上清IFN-γ含量 | 第20-21页 |
| ·统计学分析 | 第21页 |
| 2 结果 | 第21-25页 |
| ·PHA 刺激培养48h 后T 细胞表达PD-1 | 第21-22页 |
| ·PEGFP-N1-CD274-GFP 质粒转染Hela 细胞后的荧光表达 | 第22页 |
| ·PEGFP-N1-CD274-GFP 质粒转染的Hela 细胞表达PD-L1 | 第22-23页 |
| ·PD-L1~+Hela 细胞抑制活化T 细胞增殖 | 第23页 |
| ·PD-L1~+Hela 细胞促进活化T 细胞早期凋亡和坏死 | 第23-24页 |
| ·PD-L1~+Hela 细胞抑制活化T 细胞分泌IFN-γ | 第24-25页 |
| 3 讨论 | 第25-26页 |
| 结论 | 第26-27页 |
| 参考文献 | 第27-29页 |
| 文献综述 | 第29-43页 |
| 参考文献 | 第35-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第44页 |
