摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5-6页 |
第一章 前言 | 第9-20页 |
1.1 生物燃料—生物丁醇的研究现状 | 第9-11页 |
1.1.1 生物丁醇作为生物燃料的优势 | 第9页 |
1.1.2 微生物生产生物丁醇的研究 | 第9-10页 |
1.1.3 微生物生产生物丁醇存在的耐受性问题 | 第10-11页 |
1.2 光合蓝细菌生产生物丁醇研究内容 | 第11-13页 |
1.2.1 光合蓝细菌生产生物丁醇的优势及研究现状 | 第11-12页 |
1.2.2 光合蓝细菌对丁醇的耐受机理研究 | 第12-13页 |
1.3 光合蓝细菌中的双组份信号转导系统 | 第13-14页 |
1.4 微生物代谢组学的研究 | 第14-19页 |
1.4.1 微生物代谢组学的发展 | 第14-15页 |
1.4.2 微生物代谢组学的研究方法 | 第15-18页 |
1.4.3 基于LC-MS/MS的代谢组学方法检测特定代谢物所面临的挑战 | 第18-19页 |
1.5 本文的主要研究内容 | 第19-20页 |
第二章 基于LC-MS的光合蓝细菌代谢组方法优化 | 第20-33页 |
2.1 实验材料与方法 | 第20-24页 |
2.1.1 实验材料 | 第20-23页 |
2.1.2 实验方法 | 第23-24页 |
2.2 实验结果与讨论 | 第24-31页 |
2.2.1 LC-MS检测代谢物方法的优化 | 第24-27页 |
2.2.2 样品前处理条件的优化 | 第27-28页 |
2.2.3 方法的可靠性和重复性检测 | 第28-31页 |
2.3 小结 | 第31-33页 |
第三章 代谢组分析丁醇胁迫条件下集胞藻中sll0039的调控机制 | 第33-54页 |
3.1 实验材料与方法 | 第33-40页 |
3.1.1 实验材料 | 第33-35页 |
3.1.2 实验方法 | 第35-40页 |
3.2 实验结果与讨论 | 第40-52页 |
3.2.1 ?sll0039突变株的构建与验证 | 第40-42页 |
3.2.2 菌株在丁醇胁迫条件下的生长情况 | 第42-44页 |
3.2.3 ?sll0039互补株构建和sll0039在野生株中的过表达 | 第44-45页 |
3.2.4 基于LC-MS代谢组学分析 | 第45-48页 |
3.2.5 基于GC-MS全扫描代谢组学分析 | 第48-52页 |
3.3 小结 | 第52-54页 |
第四章 两个对丁醇胁迫条件敏感的反应调控因子突变体间的代谢组学分析比较 | 第54-60页 |
4.1 实验材料与方法 | 第54-55页 |
4.1.1 实验材料 | 第54页 |
4.1.2 实验方法 | 第54-55页 |
4.2 实验结果与讨论 | 第55-58页 |
4.2.1 ?sll0039突变株和?slr1037突变株在丁醇胁迫条件下的生长状况 | 第55页 |
4.2.2 基于LC-MS代谢组学分析结果对比 | 第55-57页 |
4.2.3 基于GC-MS全扫描代谢组学分析对比 | 第57-58页 |
4.3 小结 | 第58-60页 |
第五章 结论与展望 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-73页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第73-75页 |
致谢 | 第75-76页 |
附表 | 第76-93页 |