| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 研究背景综述 | 第11-61页 |
| 1.1 微小核糖核酸(microRNAs)的研究进展概述 | 第11-17页 |
| 1.1.1 miRNAs的发现历程 | 第11-12页 |
| 1.1.2 miRNAs的加工成熟过程 | 第12-14页 |
| 1.1.3 miRNAs的作用机制 | 第14-16页 |
| 1.1.4 miRNAs的生物学意义 | 第16-17页 |
| 1.2 循环miRNAs (Circulating miRNAs) | 第17-26页 |
| 1.2.1 细胞通讯与循环miRNAs | 第17-19页 |
| 1.2.2 循环miRNAs的基本概念 | 第19-20页 |
| 1.2.3 循环miRNAs的研究方向 | 第20-21页 |
| 1.2.4 血清miRNAs | 第21-23页 |
| 1.2.5 分泌miRNAs (Secreted miRNAs) | 第23-26页 |
| 1.3 Microvesicle | 第26-31页 |
| 1.3.1 Microvesicle的分类 | 第26-27页 |
| 1.3.2 Microvesicle的作用方式 | 第27-30页 |
| 1.3.3 Microvesicle与miRNA | 第30-31页 |
| 1.4 调节性T细胞(Regulatory T cell,Treg) | 第31-42页 |
| 1.4.1 调节性T细胞的产生和分类 | 第32-33页 |
| 1.4.2 调节性T细胞的特征 | 第33-34页 |
| 1.4.3 调节性T细胞的活化与增殖 | 第34-35页 |
| 1.4.4 转录因子Foxp3在调节性T细胞发育和功能发挥中的作用 | 第35-36页 |
| 1.4.5 调节性T细胞的免疫抑制机制 | 第36-37页 |
| 1.4.6 调节性T细胞的调节机制 | 第37-39页 |
| 1.4.7 调节性T细胞影响的生理病理过程 | 第39-41页 |
| 1.4.8 调节性T细胞与miRNA | 第41-42页 |
| 1.5 巨噬细胞 | 第42-50页 |
| 1.5.1 巨噬细胞的极化及功能 | 第42-44页 |
| 1.5.2 肿瘤相关巨噬细胞(TAM) | 第44-49页 |
| 1.5.3 巨噬细胞与miRNA | 第49-50页 |
| 1.6 本研究的目的与意义 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 第二章 肿瘤细胞分泌的miR-214体内体外促进调节性T细胞增殖的功能与机制研究 | 第61-87页 |
| 2.1 引言 | 第61-63页 |
| 2.2 实验材料 | 第63-65页 |
| 2.3 实验方法 | 第65-70页 |
| 2.4 实验结果 | 第70-83页 |
| 2.4.1 肿瘤病人和肿瘤小鼠中miR-214的表达和分泌增加 | 第70-73页 |
| 2.4.2 肿瘤细胞LLC分泌的miR-214能在CD4~+T细胞中通过靶向PTEN诱导Treg细胞的增殖 | 第73-79页 |
| 2.4.3 肿瘤细胞LLC分泌的miRNA能通过包裹在LLC MV中进入小鼠体内的CD4~+T细胞 | 第79-80页 |
| 2.4.4 肿瘤细胞LLC分泌的miR-214能通过包裹在LLC MV中进入小鼠体内CD4~+T细胞,抑制PTEN的蛋白水平,从而诱导Treg的增值 | 第80-83页 |
| 2.5 讨论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-87页 |
| 第三章 巨噬细胞分泌的miR-150对肿瘤血管新生的影响 | 第87-114页 |
| 3.1 引言 | 第87-88页 |
| 3.2 实验材料 | 第88-90页 |
| 3.3 实验方法 | 第90-92页 |
| 3.4 实验结果 | 第92-110页 |
| 3.4.1 巨噬细胞极化为M1和M2型时miRNA表达谱有差异 | 第92-98页 |
| 3.4.2 M2型巨噬细胞较高水平的miR-150可能对肿瘤的影响 | 第98-101页 |
| 3.4.3 分泌的miR-150促进血管内皮细胞HMEC-1的成环 | 第101-105页 |
| 3.4.4 分泌的miR-150能在体内促进血管生成 | 第105-109页 |
| 3.4.5 293T MV中包裹miR-150的ASO能减少血管生成,抑制肿瘤生长 | 第109-110页 |
| 3.5 讨论 | 第110-112页 |
| 参考文献 | 第112-114页 |
| 攻读博士学位期间论文 | 第114-117页 |
| 致谢 | 第117-119页 |
