E(spl)和CG7510基因对果蝇天然免疫的作用
摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-8页 |
1 绪论 | 第8-14页 |
·黑腹果蝇研究进展 | 第8页 |
·果蝇的天然免疫 | 第8-10页 |
·体液免疫 | 第9页 |
·细胞免疫 | 第9-10页 |
·黑化反应 | 第10页 |
·Notch信号转导通路对天然免疫的影响 | 第10-11页 |
·E(spl)基因的研究进展 | 第11-12页 |
·CG7510基因的介绍 | 第12页 |
·P因子系统 | 第12-13页 |
·P因子简介 | 第12-13页 |
·P因子在果蝇中的应用 | 第13页 |
·本研究的目的及意义 | 第13-14页 |
2 材料 | 第14-16页 |
·果蝇品系及培养方法 | 第14页 |
·果蝇的野生型品系及突变体品系 | 第14页 |
·培养方法 | 第14页 |
·病原体 | 第14页 |
·病原体种类 | 第14页 |
·荧光标记的病原体 | 第14页 |
·试剂与培养基 | 第14-15页 |
·试剂 | 第14-15页 |
·培养基 | 第15页 |
·主要仪器 | 第15-16页 |
3 实验方法 | 第16-22页 |
·成虫的生存率 | 第16页 |
·成虫血细胞的噬菌作用 | 第16页 |
·分析浆细胞的数量 | 第16页 |
·果蝇总RNA提取 | 第16-17页 |
·RNA反转录为cDNA | 第17页 |
·RT-PCR检测血细胞发育相关基因 | 第17-18页 |
·定量PCR测定抗菌肽的表达量 | 第18页 |
·幼虫血细胞的吞噬作用 | 第18-19页 |
·血细胞肌动蛋白染色 | 第19页 |
·P因子切除技术获得低表达突变体 | 第19-20页 |
·果蝇基因组DNA的提取方法 | 第20-21页 |
·PCR检测P因子切除情况 | 第21页 |
·RT-PCR检测制备突变体CG7510的表达量 | 第21-22页 |
4 结果与分析 | 第22-31页 |
·E(spl)基因对果蝇天然免疫的影响 | 第22-25页 |
·E(spl)基因对果蝇生存率的影响 | 第22-23页 |
·E(spl)突变体血细胞噬菌功能降低 | 第23-24页 |
·E(spl)突变体血细胞数量异常增加 | 第24页 |
·E(spl)基因对体液免疫的影响 | 第24-25页 |
·CG7510基因对果蝇天然免疫的影响 | 第25-27页 |
·CG7510突变体幼虫血细胞吞噬作用降低 | 第25-26页 |
·CG7510突变体血细胞肌动蛋白分布异常 | 第26-27页 |
·血细胞发育相关基因的检测 | 第27页 |
·检测低表达突变体CG7510 mRNA的表达量 | 第27-28页 |
·低表达CG7510突变体的制备 | 第28-31页 |
·纯合突变体果蝇的筛选 | 第28-30页 |
·CG7510突变体mRNA水平检测 | 第30-31页 |
5 讨论 | 第31-35页 |
·E(spl)对果蝇天然免疫的影响 | 第31页 |
·CG7510对果蝇天然免疫的影响 | 第31-32页 |
·CG7510对果蝇血细胞发育的影响 | 第32-33页 |
·CG7510新型突变体的构建 | 第33-35页 |
结论 | 第35-37页 |
参考文献 | 第37-43页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第43-44页 |
致谢 | 第44-45页 |