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miR-31在肺癌细胞耐药中的作用机制研究

摘要第1-6页
Abstract第6-8页
目录第8-11页
引言第11-13页
1 实验设计方案第13-16页
   ·实验目的和意义第13页
   ·研究内容第13-14页
   ·技术流程第14页
   ·实验方案第14-16页
2 实验材料和方法第16-37页
   ·材料第16-18页
     ·细胞株、大肠杆菌和载体第16页
     ·耗材第16页
     ·实验设备第16-18页
   ·主要试剂和配制第18-26页
     ·主要试剂第18-20页
     ·培养基(RPM-1640)第20页
     ·PBS 溶液第20-21页
     ·D-Hanks 溶液第21页
     ·胰酶(0.25% )第21页
     ·50×Tris-醋酸(TAE)第21页
     ·蛋白裂解液第21页
     ·1 % 琼脂糖凝胶第21-22页
     ·10% SDS 的配制第22页
     ·PMSF(10 mmol/L)第22页
     ·5×SDS 上样缓冲液第22页
     ·1 mol / L Tris·HCL (pH=6.8)第22页
     ·1.5 mol / L Tris·HCL (pH=8.8)第22-23页
     ·30 % Acr : Bis 混合液第23页
     ·10 % AP第23页
     ·10 % 分离胶(10 ml)第23页
     ·5 % 浓缩胶(5 ml)第23-24页
     ·蛋白电泳缓冲液第24页
     ·蛋白转膜缓冲液第24页
     ·TBS 缓冲液第24页
     ·TBST 缓冲液第24-25页
     ·MTT 溶液(5 mg / ml)第25页
     ·0.5 M EDTA(PH=8.0)第25页
     ·1 M Tris(PH=8.0)第25页
     ·1× TE Buffer第25页
     ·LB 液体培养基第25-26页
     ·LB 固体培养基(氨苄)第26页
   ·实验方法第26-37页
     ·培养细胞和细胞传代第26页
     ·冻存细胞第26-27页
     ·复苏细胞第27页
     ·用 MTT 检测细胞的生长情况第27页
     ·设计 miR-31 的阻遏物以及类似物第27页
     ·96 孔板中转染 RNAs第27-28页
     ·提取细胞的总蛋白第28页
     ·测定所提蛋白的含量(碧云天 Bradford 试剂盒)第28页
     ·SDS-PAGE 电泳第28-29页
     ·转膜(半干法)第29页
     ·免疫反应第29-30页
     ·细胞培养瓶中总 RNA 的提取第30页
     ·RNA 含量测定第30页
     ·逆转录反应(miRNA)第30-31页
     ·逆转录反应(mRNA)第31页
     ·实时定量 PCR第31-32页
     ·制备 TG1 大肠杆菌感受态细胞第32-33页
     ·TG1 大肠杆菌感受态细胞的转化第33页
     ·核酸内切酶(XbaI)单酶切第33页
     ·凝胶电泳(以 1 % 琼脂糖为例)第33-34页
     ·回收酶切产物(AxyPrep DNA 凝胶回收试剂盒)第34页
     ·连接第34-35页
     ·提取构建好的质粒 DNA(天根高纯度质粒抽提试剂盒)第35页
     ·双荧光素酶报告基因检测系统的操作第35-36页
     ·细胞凋亡(流式细胞仪)第36页
     ·统计方法第36-37页
3 实验结果第37-50页
   ·筛选对顺铂耐药和敏感的肺癌细胞株第37-39页
   ·miR-31 在耐药肺癌细胞中显著高表达第39-40页
   ·过表达 miR-31 ,增加细胞对 DDP 的耐药性第40-41页
   ·抑制 miR-31 的表达,增加细胞对 DDP 的敏感性第41-42页
   ·miR-31 负调控 ABCB9 的表达第42-44页
   ·下调 ABCB9 表达,可使 miR-31 表达升高第44-45页
   ·ABCB9 是 miR-31 的直接作用靶点第45-46页
   ·下调 ABCB9 可增加细胞对 DDP 的耐药性第46-47页
   ·异常表达 miR-31 表达可影响 DDP 诱导的细胞凋亡变化第47-50页
4 结论第50-51页
5 讨论第51-53页
参考文献第53-56页
附录 A 缩写表第56-57页
附录 B 综述第57-72页
 参考文献(References)第67-72页
在学研究成果第72-74页
致谢第74页

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