| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 縮略表 | 第8-9页 |
| 第一部分 文献综述 | 第9-19页 |
| 1. 百合概述 | 第9页 |
| 2. 百合愈伤诱导研究进展 | 第9-14页 |
| ·基因型和外植体类型 | 第10-11页 |
| ·培养方式 | 第11-12页 |
| ·培养基成分 | 第12-14页 |
| 3. 百合遗传转化研究进展 | 第14-19页 |
| ·受体来源及发育状态 | 第15-16页 |
| ·受体材料基因型和农杆菌菌株类型 | 第16页 |
| ·Vir基因活化物 | 第16-17页 |
| ·遗传转化过程中的培养条件和培养方法 | 第17-18页 |
| ·外源基因的表达情况 | 第18-19页 |
| 第二部分 麝香百合愈伤组织诱导 | 第19-28页 |
| 1. 材料与方法 | 第19-22页 |
| ·实验材料 | 第19页 |
| ·实验所用药品 | 第19页 |
| ·培养条件 | 第19页 |
| ·试验方法 | 第19-22页 |
| ·不同浓度的NAA和TDZ组合对麝香百合愈伤诱导效果影响的实验设计 | 第19-20页 |
| ·不同浓度的PIC和TDZ组合对麝香百合愈伤诱导效果影响的实验设计 | 第20页 |
| ·麝香百合叶片作为外植体愈伤诱导的实验设计 | 第20页 |
| ·愈伤组织形态观察的实验设计 | 第20-22页 |
| 2. 结果分析 | 第22-26页 |
| ·不同激素水平对麝香百合愈伤诱导率的影响 | 第22-24页 |
| ·NAA和TDZ组合对麝香百合愈伤组织诱导的影响 | 第22页 |
| ·PIC和TDZ组合对麝香百合愈伤组织诱导的影响 | 第22-24页 |
| ·愈伤组织形态学观察 | 第24-25页 |
| ·叶片诱导愈伤形态观察及生长情况 | 第25-26页 |
| 3. 讨论 | 第26-28页 |
| 第三部分 麝香百合遗传转化体系优化 | 第28-43页 |
| 1. 材料与方法 | 第28-33页 |
| ·实验材料 | 第28页 |
| ·转化所用的农杆菌 | 第28页 |
| ·转化过程植株培养环境 | 第28页 |
| ·实验所用药品和试剂 | 第28-29页 |
| ·实验方法 | 第29-33页 |
| ·携带GUS报告基因的不同农杆菌的获得 | 第29-31页 |
| ·麝香百合不同受体材料的抗生素选择压的确定的实验设计 | 第31页 |
| ·麝香百合遗传转化方法 | 第31-32页 |
| ·不同农杆菌菌株对麝香百合侵染能力的比较的实验设计 | 第32页 |
| ·不同组织破损方法对鳞片转化效率的影响的实验设计 | 第32-33页 |
| ·不同抗生素选择剂对麝香百合转化效率的影响的实验设计 | 第33页 |
| ·不同受体材料对麝香百合转化效率的影响的实验设计 | 第33页 |
| 2. 结果与分析 | 第33-41页 |
| ·麝香百合抗生素选择压的确定 | 第33-36页 |
| ·卡那霉素和潮霉素对麝香百合愈伤组织的抗生素选择压的确定 | 第33-34页 |
| ·卡那霉素和潮霉素对麝香百合鳞片薄层切片的抗生素选择压的确定 | 第34-35页 |
| ·卡那霉素和潮霉素对麝香百合鳞鳞茎盘的抗生素选择压的确定 | 第35-36页 |
| ·侵染麝香百合愈伤组织的农杆菌菌株活力比较 | 第36-38页 |
| ·GUS基因瞬间表达 | 第36-37页 |
| ·选择培养后GUS稳定表达情况 | 第37-38页 |
| ·不同处理方法(划伤/不划伤)对鳞片转化效率的影响 | 第38-39页 |
| ·抗性标记基因对麝香百合转化效率的比较 | 第39-40页 |
| ·GUS基因的瞬间表达 | 第39-40页 |
| ·GUS基因的稳定表达 | 第40页 |
| ·不同受体材料对麝香百合转化效率的比较 | 第40-41页 |
| 3. 讨论 | 第41-43页 |
| 第四部分 目的基因的LLDREB1的遗传转化 | 第43-47页 |
| 1. 材料与方法 | 第43-44页 |
| ·实验材料 | 第43页 |
| ·转化过程的培养环境 | 第43页 |
| ·实验所用试剂及培养基 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·麝香百合愈伤组织转化方法 | 第43页 |
| ·麝香百合鳞片和芽DNA提取方法 | 第43-44页 |
| ·抗性苗的分子检测 | 第44页 |
| 2. 结果与分析 | 第44-45页 |
| 3. 讨论 | 第45-47页 |
| 参考文献 | 第47-52页 |
| 致谢 | 第52页 |
