| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 缩略词表 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-16页 |
| 材料和方法 | 第16-25页 |
| 一、主要试剂和设备 | 第16-17页 |
| 二、AECs 的培养与鉴定 | 第17-19页 |
| 三、AECs 胶原海绵复合体的培养及细胞活性评估 | 第19-20页 |
| 四、动物模型的制作和分组 | 第20-21页 |
| 五、视神经的示踪—玻璃体注射 CTBFITC | 第21-22页 |
| 六、视网膜铺片 | 第22页 |
| 七、视网膜尼氏染色和细胞计数 | 第22页 |
| 八、视神经的冰冻切片 | 第22-23页 |
| 九、石蜡切片 | 第23页 |
| 十、视神经和视网膜的 HE 染色 | 第23页 |
| 十一、免疫组织化学染色 | 第23-24页 |
| 十二、视网膜节细胞层细胞数、内网层厚度和内核层厚度的计算 | 第24页 |
| 十三、免疫组化染色的积分光密度分析 | 第24页 |
| 十四、CTBFITC 示踪的 RGCs 轴突面积的计算 | 第24-25页 |
| 十五、统计学处理 | 第25页 |
| 结果 | 第25-52页 |
| 一、AECs 的培养及鉴定 | 第25-27页 |
| 二、AECs 胶原海绵复合体 | 第27-31页 |
| 三、复合体对视网膜节细胞的作用 | 第31-41页 |
| 四、复合体对视神经的作用 | 第41-46页 |
| 五、视神经的免疫组织化学染色结果 | 第46-52页 |
| 讨论 | 第52-58页 |
| 一、动物模型的可靠性及意义 | 第52页 |
| 二、胶原海绵为 AECs 提供良好的三维生存空间 | 第52-53页 |
| 三、AECs 胶原海绵复合体可改善视神经再生微环境 | 第53-55页 |
| 四、AECs 胶原海绵复合体对 RGCs 的保护作用 | 第55-56页 |
| 五、AECs 胶原海绵复合体对视神经再生的促进作用 | 第56-58页 |
| 附录 | 第58-62页 |
| 参考文献 | 第62-68页 |
| 全文小结 | 第68-69页 |
| 创新点和意义 | 第69-70页 |
| 文献综述 | 第70-81页 |
| 参考文献 | 第76-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
