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猪细环病毒2型(TTSuV2)ORF1主要优势抗原表位区的原核表达及间接阻断ELISA方法的建立

中文摘要第1-5页
Abstract第5-7页
縮略词表第7-12页
第一章 Torque teno sus virus(TTSuV)的研究进展第12-19页
 1 TTSuV的发现第12页
 2 TTSuV的分类第12页
 3 TTSuV的病原学特征第12-13页
   ·TTSuV基因组及其编码产物第12-13页
   ·TTSuV的理化特性第13页
   ·TTSuV的致病性第13页
 4 TTSuV的流行病学第13-14页
   ·国外猪群TTSuV的流行概况第14页
   ·我国猪群TTSuV的流行概况第14页
 5 TTSuV诊断方法的研究进展第14-19页
   ·TTSuV的分子生物学检测方法第14-16页
   ·TTSuV分型的检测第16页
   ·TTSuV的血清学诊断法第16-18页
   ·病理组织学诊断第18页
   ·动物模型的建立第18页
   ·电镜技术第18-19页
 6 研究的目的及意义第19页
第二章 TTSuV2-ORF1基因原核表达及其多克隆抗体的制备第19-33页
 1 材料与方法第19-25页
   ·主要材料与试剂第19页
   ·载体和受体菌第19页
   ·主要试剂第19-20页
   ·主要仪器设备第20页
   ·主要溶剂配制第20-21页
     ·琼脂糖凝胶电泳溶液第20页
     ·培养基配制第20-21页
     ·SDS-PAGE电泳相关溶液第21页
     ·蛋白质纯化试剂第21页
     ·Western-blot相关试剂第21页
   ·TTSuV2 ORF1优势抗原表位区的筛选第21-22页
   ·TTSuV2 ORF1基因的克隆及重组质粒构建第22-24页
     ·引物设计与合成第22页
     ·目的基因扩增第22-23页
     ·连接与转化第23页
     ·重组质粒的筛选第23页
     ·重组表达质粒构建第23-24页
     ·重组表达质粒pET-TTSuV2-ORF1的鉴定第24页
   ·重组蛋白的诱导和表达第24页
   ·重组蛋白的纯化及浓度测定第24页
   ·重组蛋白的Western blot检测第24-25页
   ·多克隆抗体的制备第25页
   ·多克隆抗体的鉴定第25页
 2 结果第25-32页
   ·TTSuV2 ORF1表位区筛选第25-28页
     ·TTSuV2 ORF1抗原性、亲水性和表面可及型分析第25-27页
     ·TTSuV2 ORF1二级结构预测分析第27-28页
   ·目的基因扩增结果第28页
   ·重组质粒的构建和鉴定第28-29页
   ·重组蛋白的表达与鉴定第29-30页
   ·重组蛋白的纯化第30页
   ·重组蛋白Western blot检测第30-31页
   ·多克隆抗体的鉴定第31-32页
 3 讨论第32-33页
第三章 TTSuV2间接阻断ELISA的建立与初步应用第33-44页
 1 材料与方法第33-35页
   ·主要试剂第33页
   ·包被抗原的制备第33页
   ·间接阻断ELISA方法的建立第33-35页
     ·间接阻断ELISA的程序第33页
     ·最佳包被液的筛选第33-34页
     ·最佳封闭液的筛选第34页
     ·抗原与抗体最佳反应条件的确定第34页
     ·酶标抗体工作浓度和作用时间的确定第34页
     ·反应模式的选择第34页
     ·待检猪血清最佳浓度的确定第34页
     ·待检血清和阻断抗体作用时间的确定第34页
     ·其他反应条件的确定第34-35页
     ·临界值的确定第35页
     ·特异性实验第35页
     ·敏感性实验第35页
     ·间接阻断ELISA与Western blot比较第35页
 2 结果第35-43页
   ·最佳包被液的筛选第35-36页
   ·最佳封闭液的筛选第36-37页
   ·抗原包被浓度与阻断抗体工作浓度的确定第37页
   ·酶标抗体工作浓度的确定第37-38页
   ·反应模式的选择第38页
   ·待检猪血清最佳稀释度的确定第38-39页
   ·待检血清和阻断抗体作用时间的确定第39页
   ·其他反应条件的确定第39-41页
   ·临界值的确定第41页
   ·特异性实验第41-42页
   ·敏感性实验第42-43页
   ·间接阻断ELISA与Western blot比较第43页
 3 讨论第43-44页
第四章 结论与创新点第44-46页
 1 TTSuV2间接阻断ELISA方法的建立第44-45页
 2 创新点第45-46页
参考文献第46-50页
致谢第50-51页
附录第51页

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