摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
第一章 绪论 | 第12-26页 |
1. 废用性肌萎缩的研究进展 | 第12-23页 |
·废用性肌萎缩模型 | 第12-14页 |
·废用状态下肌肉形态学的改变 | 第14-15页 |
·废用状态下血液流变学及微血管密度的改变 | 第15-16页 |
·废用状态下肌肉功能的变化 | 第16-17页 |
·废用性肌萎缩的发生机制 | 第17-20页 |
·废用性肌萎缩的防治 | 第20-23页 |
2. 冬眠达乌尔黄鼠骨骼肌生理的研究进展 | 第23-24页 |
·冬眠达乌尔黄鼠骨骼肌形态结构的变化 | 第23页 |
·冬眠达乌尔黄鼠骨骼肌蛋白含量的变化 | 第23-24页 |
3. 本研究的目的和意义 | 第24-26页 |
第二章 废用对冬眠及非冬眠动物比目鱼肌血氧供应能力的影响及川芎嗪的对抗作用 | 第26-36页 |
·前言 | 第26页 |
·材料和方法 | 第26-29页 |
·实验动物及分组 | 第26页 |
·实验动物模型建立 | 第26-27页 |
·取样 | 第27页 |
·检测指标 | 第27页 |
·药品制备及给药方式 | 第27页 |
·主要仪器与溶液的配制 | 第27-28页 |
·实验方法 | 第28页 |
·数据采集及统计分析 | 第28-29页 |
·实验结果 | 第29-34页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌毛细血管密度(cD)及毛细血管数/肌纤维数(C/F)的影响 | 第29-31页 |
·冬眠黄鼠对比目鱼肌毛细血管密度(CD)及毛细血管数/肌纤维数(C/F)的影响 | 第31-34页 |
·讨论 | 第34-36页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪灌药对比目鱼肌毛细血管密度(CD)及毛细血管数/肌纤维数(C/F)的影响 | 第34页 |
·冬眠黄鼠对比目鱼肌毛细血管密度(CD)及毛细血管数/肌纤维数(C/F)的影响 | 第34-36页 |
第三章 废用对冬眠及非冬眠动物比目鱼肌HIF-1α、VEGF mRNA的影响及川芎嗪的对抗作用 | 第36-51页 |
·前言 | 第36-37页 |
·材料和方法 | 第37-40页 |
·实验动物及分组 | 第37页 |
·实验动物模型建立 | 第37页 |
·取样 | 第37页 |
·检测指标 | 第37页 |
·主要仪器与试剂 | 第37-38页 |
·RT-PCR和Real Time PCR实验方法 | 第38-40页 |
·实验结果 | 第40-49页 |
·RT-PCR引物特异性及退火温度的检测 | 第40-41页 |
·各组大鼠HIF-1αmRNA、VEGF mRNA表达水平的测定 | 第41页 |
·Real Time PCR反应质量鉴定 | 第41-46页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌HIF-1α mRNA和VEGF mRNA水平表达的影响 | 第46-47页 |
·冬眠黄鼠对比目鱼肌HIF.1αmRNA和VEGF mRNA水平表达的影响 | 第47-49页 |
·分析讨论 | 第49-51页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌HIF-1α和VEGF mRNA表达的影响 | 第49-50页 |
·冬眠黄鼠对比目鱼肌HIF-1α和VEGF mRNA表达的影响 | 第50-51页 |
第四章 废用对冬眠及非冬眠动物比目鱼肌糖酵解酶活性的影响及川芎嗪的对抗作用 | 第51-60页 |
·前言 | 第51页 |
·材料和方法 | 第51-53页 |
·实验动物及分组 | 第51页 |
·实验动物模型建立 | 第51页 |
·取样 | 第51-52页 |
·主要仪器与溶液的配制 | 第52页 |
·实验方法 | 第52-53页 |
·数据采集及统计分析 | 第53页 |
·实验结果 | 第53-57页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌己糖激酶(HK)的影响 | 第53-54页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌丙酮酸激酶(PK)的影响 | 第54-55页 |
·冬眠达乌尔黄鼠比目鱼肌中己糖激酶活性(HK)活性的变化 | 第55-56页 |
·冬眠达乌尔黄鼠比目鱼肌中丙酮酸激酶(PK)活性的变化 | 第56-57页 |
·讨论 | 第57-60页 |
·大鼠后肢去负荷及川芎嗪治疗对比目鱼肌己糖激酶(HK)和丙酮酸激酶(PK)活性的影响 | 第57-58页 |
·冬眠达乌尔黄鼠比目鱼肌中己糖激酶(HK)和丙酮酸激酶(PK)活性的影响 | 第58-60页 |
结论与创新点 | 第60-61页 |
不足及展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-71页 |
附录 | 第71-72页 |
攻读硕士学位期间取得的学术成果 | 第72-73页 |
致谢 | 第73页 |