摘要 | 第1-6页 |
ABSTRACT | 第6-11页 |
第一部分 研究论文 | 第11-53页 |
引言 | 第11-13页 |
第一章 扁桃体淋巴细胞的分离与培养 | 第13-24页 |
1 材料 | 第13-14页 |
·主要试剂 | 第13-14页 |
·主要器材 | 第14页 |
·实验材料 | 第14页 |
2 方法 | 第14-18页 |
·扁桃体淋巴细胞的分离 | 第14页 |
·尼龙棉柱分离法分离T、B细胞 | 第14-15页 |
·T、B细胞的检测 | 第15-17页 |
·T、B细胞的培养 | 第17页 |
·T、B细胞的冻存 | 第17页 |
·T、B细胞的解冻 | 第17页 |
·T、B细胞的生物学检测 | 第17-18页 |
3 结果 | 第18-21页 |
·人淋巴细胞形态观察 | 第18-19页 |
·扁桃体中T、B淋巴细胞的存活率 | 第19页 |
·T、B淋巴细胞的纯度 | 第19-20页 |
·人扁桃体T、B淋巴细胞的生长曲线测定 | 第20-21页 |
·人扁桃体T、B细胞的冻存、解冻后的存活率 | 第21页 |
4 讨论 | 第21-22页 |
参考文献 | 第22-24页 |
第二章 HEPG2细胞及HELA细胞的HGPRT缺陷型细胞系的建立 | 第24-35页 |
1 材料 | 第24-25页 |
·主要试剂 | 第24页 |
·主要器材 | 第24-25页 |
·实验细胞 | 第25页 |
2 方法 | 第25-27页 |
·HepG2与Hela细胞的培养条件的建立 | 第25-26页 |
·缺陷型细胞的诱导与筛选 | 第26页 |
·缺陷型细胞的生物学鉴定 | 第26-27页 |
3 结果 | 第27-33页 |
·MNNG最佳终浓度与处理时间 | 第28-29页 |
·细胞的HAT敏感性检测结果 | 第29页 |
·6-TG中存活率的比较 | 第29-30页 |
·HGPRT缺陷型HepG2细胞、Hela细胞的形态观察 | 第30页 |
·诱变后HepG2细胞、Hela细胞生长曲线绘制 | 第30-32页 |
·HepG2、Hela缺陷型细胞的染色体核型 | 第32-33页 |
4 讨论 | 第33-34页 |
参考文献 | 第34-35页 |
第三章 人扁桃体淋巴细胞与HGPRT细胞杂交瘤制备 | 第35-46页 |
1 材料 | 第35页 |
·主要试剂 | 第35页 |
·主要器材 | 第35页 |
·实验细胞 | 第35页 |
2 方法 | 第35-38页 |
·人淋巴细胞的培养与准备 | 第36页 |
·HGPRT缺陷型人癌细胞系的培养与准备 | 第36页 |
·杂交瘤细胞的制备 | 第36-37页 |
·杂交瘤细胞的扩大培养 | 第37页 |
·饲养层的制备 | 第37-38页 |
·杂交瘤细胞形态学观察 | 第38页 |
·杂交瘤细胞染色体的检测 | 第38页 |
3 结果 | 第38-43页 |
·融合条件的探索 | 第38-39页 |
·饲养层细胞制备与HGPRT缺陷型HepG2、Hela细胞的培养 | 第39页 |
·杂交瘤细胞株的建立 | 第39-41页 |
·杂交瘤细胞的扩大培养 | 第41页 |
·杂交瘤细胞的染色体 | 第41-42页 |
·杂交瘤细胞的生物学特性 | 第42-43页 |
4 讨论 | 第43-45页 |
5 结论 | 第45-46页 |
附录 | 第46-53页 |
第二部分 文献综述 人源化单克隆抗体的研究进展与应用前景 | 第53-61页 |
1. 单克隆抗体(McAb)的制备 | 第53-55页 |
·原理 | 第53-54页 |
·杂交瘤技术的特性 | 第54页 |
·杂交瘤细胞的制备方法 | 第54-55页 |
2. 单克隆抗体应用 | 第55-59页 |
·用于疾病诊断方面 | 第56页 |
·用于疾病的治疗 | 第56-58页 |
·抗肿瘤单抗偶联物(生物导弹) | 第58-59页 |
3. 杂交瘤存在的一些技术问题 | 第59-60页 |
·提高分泌抗体的杂交瘤产量 | 第59-60页 |
·改进单克隆抗体的质量 | 第60页 |
·杂交瘤的不稳定性 | 第60页 |
4. 展望 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
在读硕士期间已发表和待发表的论文 | 第67页 |