中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
英文缩写 | 第11-15页 |
第1章 绪论 | 第15-23页 |
·五味子木脂素类成分研究进展 | 第15-21页 |
·概述 | 第15-16页 |
·五味子木脂素类化学成分研究 | 第16-17页 |
·五味子木脂素类成分定性分析方法 | 第17-19页 |
·五味子木脂素类成分定量分析方法 | 第19-21页 |
·展望 | 第21页 |
·立题依据和研究思路 | 第21-23页 |
·课题来源 | 第21页 |
·立题依据 | 第21-22页 |
·研究思路 | 第22-23页 |
第2章 五味子木脂素提取工艺及化学成分研究 | 第23-35页 |
·五味子木脂素提取工艺研究 | 第23-30页 |
·仪器、试剂及材料 | 第23页 |
·五味子提取物中指标性成分的含量测定方法 | 第23-26页 |
·提取工艺研究 | 第26-30页 |
·五味子木脂素类化学成分研究 | 第30-35页 |
·仪器、试剂及材料 | 第30页 |
·提取及分离方法 | 第30页 |
·结构鉴定 | 第30-35页 |
第3章 五味子木脂素类成分含量测定方法研究 | 第35-64页 |
·高效液相色谱法测定五味子和南五味子中 8 种主要木脂素的含量 | 第35-49页 |
·仪器、试剂及材料 | 第35-37页 |
·溶液的制备 | 第37页 |
·HPLC 色谱条件及条件优化 | 第37-41页 |
·方法学考察 | 第41-45页 |
·样品测定 | 第45-47页 |
·结果与讨论 | 第47-49页 |
·胶束电动毛细管电泳法(MEKC)快速分离检测五味子和南五味子中 8 种木脂素类成分 | 第49-64页 |
·仪器、试剂及材料 | 第49-50页 |
·溶液的制备 | 第50页 |
·电泳条件及条件优化 | 第50-55页 |
·方法学考察 | 第55-59页 |
·样品分析 | 第59-62页 |
·不同部位木脂素含量测定 | 第62页 |
·结果与讨论 | 第62-64页 |
第4章 五味子指纹图谱研究 | 第64-95页 |
·五味子 HPLC 指纹图谱研究 | 第64-74页 |
·仪器、试剂及材料 | 第64页 |
·溶液的制备 | 第64-65页 |
·HPLC 色谱条件及方法学考察 | 第65-66页 |
·五味子 HPLC 指纹图谱的建立 | 第66-73页 |
·讨论 | 第73-74页 |
·五味子高效毛细管电泳(HPCE)指纹图谱研究 | 第74-82页 |
·仪器、试剂及材料 | 第74页 |
·溶液的制备 | 第74页 |
·电泳条件及方法学考察 | 第74-76页 |
·五味子 HPCE 指纹图谱的建立 | 第76-81页 |
·讨论 | 第81-82页 |
·五味子红外(IR)指纹图谱研究 | 第82-89页 |
·仪器、试剂及材料 | 第82页 |
·实验方法与方法学考察 | 第82-83页 |
·结果与分析 | 第83-88页 |
·讨论 | 第88-89页 |
·五味子随机扩增 DNA 多态性(RAPD)指纹图谱研究 | 第89-95页 |
·仪器、试剂及材料 | 第89-90页 |
·溶液的制备 | 第90-91页 |
·实验方法 | 第91-92页 |
·结果与分析 | 第92-94页 |
·讨论 | 第94-95页 |
第5章 五味子提取物(SCEs)对H2O2诱导氧化损伤的胰岛细胞RINm5F 的保护作用 | 第95-103页 |
·仪器、试剂及材料 | 第95-96页 |
·溶液及样品制备 | 第96页 |
·实验方法 | 第96-98页 |
·细胞培养 | 第96-97页 |
·MTT 法测定细胞活性 | 第97-98页 |
·胰岛细胞培养液中 SOD 活力及 MDA 含量 | 第98页 |
·胰岛细胞内 SOD 活力及 MDA 含量 | 第98页 |
·统计学分析 | 第98页 |
·实验结果 | 第98-101页 |
·SCEs 对胰岛细胞增殖的作用 | 第98-99页 |
·SCEs 对 H2O2诱导氧化损伤的胰岛细胞的保护作用 | 第99-100页 |
·胰岛细胞培养液中 SOD 活力及 MDA 含量 | 第100页 |
·胰岛细胞内 SOD 活力及 MDA 含量 | 第100-101页 |
·讨论 | 第101-103页 |
第6章 结论 | 第103-105页 |
创新点 | 第105-106页 |
参考文献 | 第106-113页 |
附图 | 第113-119页 |
作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第119-122页 |
致谢 | 第122页 |