| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 目录 | 第5-7页 |
| 绪论 | 第7-17页 |
| 1. 光动力学疗法 | 第7-10页 |
| 影响光动力疗法的几个主要因素 | 第7-10页 |
| 光敏剂 | 第7-9页 |
| 光源 | 第9-10页 |
| 组织氧浓度 | 第10页 |
| 2. 螺旋藻及藻蓝蛋白 | 第10-13页 |
| 螺旋藻 | 第10-12页 |
| 藻蓝蛋白 | 第12-13页 |
| 3. 藻蓝蛋白的分离方法 | 第13-15页 |
| 4. 藻蓝蛋白光动力学研究进展 | 第15-16页 |
| 5. 本实验目的与意义 | 第16-17页 |
| 第一章 藻蓝蛋白亚基的制备与鉴定 | 第17-24页 |
| ·藻蓝蛋白C-PC的提取 | 第17-18页 |
| ·实验材料与试剂 | 第17页 |
| ·细胞粗提 | 第17-18页 |
| ·过柱纯化 | 第18页 |
| ·考马斯亮蓝法测蛋白质浓度 | 第18-19页 |
| ·制作标准曲线 | 第18-19页 |
| ·聚丙烯酰胺法(PAGE)检测藻蓝蛋白亚基含量 | 第19-22页 |
| ·试剂和器材 | 第19-20页 |
| 试剂 | 第19-20页 |
| 器材 | 第20页 |
| ·操作方法 | 第20-22页 |
| 安装夹心式垂直板电泳槽 | 第20-21页 |
| 制备凝胶板 | 第21页 |
| 加样 | 第21页 |
| 电泳 | 第21-22页 |
| 染色 | 第22页 |
| 脱色 | 第22页 |
| ·藻蓝蛋白亚基的提取 | 第22-24页 |
| 方法 | 第22-24页 |
| 第二章 藻蓝蛋白亚基对细胞渗透作用特征研究 | 第24-31页 |
| ·实验材料与仪器 | 第24页 |
| ·实验材料 | 第24页 |
| ·实验仪器 | 第24页 |
| ·试剂配制 | 第24-25页 |
| 12%的重铬酸钾强酸洗液 | 第24-25页 |
| 1000×抗生素溶液的配制 | 第25页 |
| RPMI-1640培养液的配制 | 第25页 |
| DMEM培养基的配制 | 第25页 |
| ·%胰酶(1:125)的配制 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-29页 |
| ·细胞培养方法 | 第25-29页 |
| 细胞培养无菌技术 | 第25-26页 |
| 细胞冻存与复苏 | 第26-27页 |
| 贴壁细胞培养方法 | 第27-28页 |
| 悬浮细胞培养方法 | 第28-29页 |
| ·C-PC亚基在细胞渗透的实验方法 | 第29页 |
| ·结果与讨论 | 第29-31页 |
| 第三章 藻蓝蛋白亚基介导PDT对细胞抑制作用 | 第31-39页 |
| ·实验材料与仪器 | 第31页 |
| ·实验材料 | 第31页 |
| ·实验仪器 | 第31页 |
| ·实验方法 | 第31-34页 |
| ·MTT法检测C-PC介导的PDT对细胞的抑制作用 | 第31-34页 |
| ·结果 | 第34-37页 |
| ·藻蓝蛋白α亚基与a/β亚基介导的PDT对SP2/0影响的比较。 | 第34-35页 |
| ·藻蓝蛋白亚基介导的PDT在不同的照射剂量下对SP2/0细胞存活率的影响。 | 第35-36页 |
| ·藻蓝蛋白α亚基介导的PDT对COS7、C6、S180细胞存活率的影响。 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第四章 藻蓝蛋白亚基在小鼠体内代谢分布研究 | 第39-46页 |
| ·实验材料仪器 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第39页 |
| ·实验仪器 | 第39-40页 |
| ·实验方法 | 第40页 |
| 实验前处理 | 第40页 |
| 小鼠尾静脉注射 | 第40页 |
| 小鼠解剖 | 第40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-46页 |
| ·藻蓝蛋白亚基在小鼠各脏器的分布情况 | 第40-41页 |
| ·藻蓝蛋白亚基在小鼠体内潴留时间 | 第41-42页 |
| ·藻蓝蛋白亚基在胎鼠体内的分布情况 | 第42-46页 |
| 参考文献 | 第46-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第49页 |
