| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-18页 |
| 第一部分 非孟德尔遗传在EGSR水稻上的表现 | 第18-76页 |
| 引言 | 第18页 |
| 一 综述 | 第18-41页 |
| 1 水稻早世代稳定现象的发现及表现特征 | 第18-25页 |
| ·水稻早世代稳定现象发现的背景 | 第18-19页 |
| ·另类早世代稳定材料在水稻上的发现 | 第19-20页 |
| ·有关84-15及后代早代稳定特性的最初研究 | 第20-21页 |
| ·水稻早代稳定研究的新进展 | 第21-25页 |
| 2 早代稳定机理的研究进展 | 第25-35页 |
| ·早代稳定材料最初来源于远缘杂交 | 第25-31页 |
| ·普通远缘杂交的分类 | 第25-26页 |
| ·植物远缘杂交中的异常染色体行为 | 第26-27页 |
| ·植物远缘杂种细胞中亲本染色体的空间分布 | 第27-29页 |
| ·同源染色体配对的机理 | 第29页 |
| ·小麦的促进同源染色体配对基因 | 第29-31页 |
| ·Ph基因的发现及其性质 | 第29-30页 |
| ·已发现的普通小麦近缘种属中控制染色体配对基因 | 第30页 |
| ·PH基因的作用机理 | 第30-31页 |
| ·早代稳定机理的最初推测 | 第31页 |
| ·杂合性丧失促进早代稳定 | 第31-35页 |
| ·DNA片段杂交假说 | 第35页 |
| ·RNA水平上的缓存进行的DNA水平上的修复假说 | 第35页 |
| 3 展望 | 第35-36页 |
| 4 参考文献 | 第36-41页 |
| 二 材料与方法 | 第41-45页 |
| 1 材料 | 第41页 |
| 2 杂交组合 | 第41页 |
| 3 杂交后代种植及农艺性状鉴定 | 第41页 |
| 4 特异株系出现频率的统计方法 | 第41页 |
| 5 倍性鉴定 | 第41-42页 |
| ·取材 | 第41页 |
| ·根尖制片 | 第41-42页 |
| 6 同源三倍体与二倍体杂交结实性鉴定 | 第42页 |
| 7 同源三倍体与二倍体杂交受精过程及胚胎发育取材与观察 | 第42页 |
| 8 DNA提取方法 | 第42-43页 |
| 9 SSR标记 | 第43页 |
| 10 扩增产物回收、纯化 | 第43页 |
| 11 转化 | 第43-44页 |
| 12 测序用pMD18-T-Ft1质粒DNA的小量制备(碱法) | 第44-45页 |
| 13 测序 | 第45页 |
| 三 结果与分析 | 第45-66页 |
| 1 同源三倍体和常规二倍体杂交后代的分析 | 第45-50页 |
| ·水稻EGSR材料的最初获得 | 第45页 |
| ·EGSR材料的微卫星分析 | 第45-47页 |
| ·EGSR材料单株间表现一致 | 第45-46页 |
| ·EGSR材料是来源于Φ49和R188的真实杂种 | 第46页 |
| ·EGSR材料属于偏父类型 | 第46-47页 |
| ·EGSR材料存在染色体水平上的重组 | 第47页 |
| ·EGSR F_2群体分离情况SSR标记分析 | 第47页 |
| ·获得EGSR材料的可重复性验证 | 第47-48页 |
| ·SAR-Ⅲ的同源三倍体与普通二倍体杂交能力分析 | 第48-50页 |
| ·传粉受精过程观察 | 第48-49页 |
| ·合子胚发育结果观察 | 第49-50页 |
| ·SAR-Ⅲ的同源三倍体对应二倍体和普通二倍体杂交结果分析 | 第50页 |
| ·SAR-Ⅲ的同源三倍体和对应二倍体的基因组差异比较 | 第50页 |
| ·EGSR材料的保存 | 第50页 |
| 2 水稻早世代稳定材料和普通二倍体杂交后代研究 | 第50-66页 |
| ·水稻早世代稳定材料和普通二倍体杂交亲本的确定 | 第50页 |
| ·水稻早世代稳定材料和普通二倍体杂交规模的确定 | 第50页 |
| ·水稻早世代稳定材料和普通二倍体杂交F_1假杂种的排除 | 第50-52页 |
| ·水稻早世代稳定材料和普通二倍体杂交F_1群体的先期室内鉴定 | 第52-57页 |
| ·特定组合的F_1单株田间表型性状统计 | 第57-61页 |
| ·早代稳定材料429／黑珍米杂交组合F_1的田间表型性状观察 | 第57-60页 |
| ·若干早代稳定材料和黑珍米的杂交后代F_1田间表型性状观察 | 第60-61页 |
| ·特定组合的F_1分子标记检测 | 第61-64页 |
| ·早代稳定材料429／黑珍米杂交组合F_1的分子标记检测 | 第61-63页 |
| ·黑珍米／429杂交组合F_1的分子标记检测 | 第63页 |
| ·992／黑珍米等正反交组合F_1的分子标记检测 | 第63-64页 |
| ·429／9311正反交组合F_1的分子标记检测 | 第64页 |
| ·429／黑珍米的F_2群体田间调查 | 第64-66页 |
| ·429／黑珍米的F_2群体SSR分析 | 第66页 |
| ·黑珍米和普通二倍体材料做杂交后代的遗传表现 | 第66页 |
| ·429／黑珍米组合的重复验证 | 第66页 |
| ·429／黑珍米的杂交种幼胚培养 | 第66页 |
| 四 讨论 | 第66-73页 |
| 1 远缘杂交可能是早代稳定材料产生的诱因 | 第67-68页 |
| 2 水稻早代稳定现象的发生在必然中存在偶然 | 第68页 |
| 3 早代稳定现象的发生具有多样性 | 第68-70页 |
| 4 早代稳定材料的遗传特点 | 第70页 |
| 5 早稳特征的后代产生频率可能受亲本选择、环境等因素影响 | 第70页 |
| 6 早稳机理的探讨 | 第70-73页 |
| ·DNA片段杂交假说 | 第70-71页 |
| ·体细胞的分类有丝分裂 | 第71-72页 |
| ·杂合性丧失 | 第72-73页 |
| 7 早稳机制发生在合子胚发育的最初阶段 | 第73页 |
| 8 后续研究设想 | 第73页 |
| 四 参考文献 | 第73-76页 |
| 第二部分 叶绿素缺乏突变体W1色素缺乏机理的探讨 | 第76-126页 |
| 引言 | 第76-77页 |
| 一 综述 | 第77-104页 |
| 1.植物中的四吡咯生物合成途径 | 第77-78页 |
| 2 四吡咯代谢的调控机制 | 第78-84页 |
| ·限速步骤：ALA合成 | 第79-81页 |
| ·Porto Ⅸ在分支点分配到Fe-螯合酶和Mg-螯合酶的控制 | 第81-82页 |
| ·光依赖的合成步骤：被子植物中的POR的功能与表达 | 第82-83页 |
| ·血红素与四吡咯中间代谢物对植物四吡咯合成的反馈控制 | 第83页 |
| ·光敏色素 | 第83-84页 |
| 3 蛋白质向叶绿体的转运 | 第84-92页 |
| ·前导肽—引导蛋白转运和定位的信号 | 第84-86页 |
| ·蛋白质跨过叶绿体被膜 | 第86页 |
| ·蛋白质跨膜转运的一般过程 | 第86页 |
| ·叶绿体被膜上的蛋白质转运机器 | 第86页 |
| ·分子伴娘的作用 | 第86-87页 |
| ·蛋白质转运至叶绿体的途径 | 第87-88页 |
| ·蛋白前体在叶绿体和其它细胞器间的分选 | 第88-89页 |
| ·蛋白前体在叶绿体中的加工 | 第89页 |
| ·蛋白在叶绿体中的定位 | 第89-92页 |
| ·外被膜上的蛋白定位 | 第90页 |
| ·内被膜上的蛋白定位 | 第90页 |
| ·类囊体系统的蛋白定位 | 第90-92页 |
| ·类囊体Sec途径 | 第90-91页 |
| ·SRP类似途径 | 第91-92页 |
| ·△pH途径 | 第92页 |
| ·自发的整合途径 | 第92页 |
| 4 结语 | 第92-93页 |
| 5 参考文献 | 第93-104页 |
| 二 材料和方法 | 第104-110页 |
| 1 植物材料 | 第104页 |
| 2 突变体W1光合能力的测定 | 第104页 |
| 3 DCIP光还原活性的测定 | 第104页 |
| 4 叶绿体超微结构观察 | 第104页 |
| 5 叶片总蛋白的提取和含量测定 | 第104-105页 |
| 6 色素含量的测定 | 第105页 |
| 7 类囊体膜蛋白的制备 | 第105页 |
| 8 温和电泳 | 第105页 |
| 9 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第105-106页 |
| 10 Western免疫印迹分析 | 第106页 |
| 11 质粒DNA的提取 | 第106-107页 |
| 12 mRNA提取 | 第107页 |
| 13 Northern杂交 | 第107-109页 |
| ·RNA的电泳分离 | 第108页 |
| ·印迹转移 | 第108页 |
| ·DNA探针及其标记 | 第108页 |
| ·杂交反应 | 第108-109页 |
| 14 叶绿素前体物质的测定 | 第109-110页 |
| ·δ-氨基乙酰丙酸(ALA)的测定 | 第109页 |
| ·胆色素原(PBG)的测定 | 第109页 |
| ·尿卟啉原Ⅲ(Urogen Ⅲ)的测定 | 第109-110页 |
| ·原卟啉Ⅸ(Proto Ⅸ)和原脱植基叶绿素(Pchlide)的测定 | 第110页 |
| ·镁原卟啉(Mg-Proto)的测定 | 第110页 |
| ·原脱植基叶绿素(Pchlide)到脱植基叶绿素(Chlide)光转化效率的测定 | 第110页 |
| 15 遗传分析和定位群体构建 | 第110页 |
| 三 实验结果与分析 | 第110-119页 |
| 1 突变体W1的表型特征 | 第110-111页 |
| 2 DCIP活性分析 | 第111页 |
| 3 光合能力比较 | 第111-112页 |
| 4 叶绿体超微结构观察 | 第112页 |
| 5 叶片光合色素及蛋白质含量的测定 | 第112-113页 |
| 6 类囊体膜色素蛋白的温和电泳分析 | 第113-114页 |
| 7 类囊体膜蛋白的SDS-PAGE与Western免疫印迹分析 | 第114页 |
| 8 Cab基因转录水平分析 | 第114-115页 |
| 9 叶绿素积累速率比较 | 第115-116页 |
| 10 叶绿素生物合成中间物含量变化比较 | 第116-117页 |
| 11.遗传分析和相关基因的分子标记定位 | 第117-119页 |
| 四 讨论 | 第119-122页 |
| 1 突变体W1的黄化特征分析 | 第119页 |
| 2 突变体W1的LHCⅡ急剧减少 | 第119-120页 |
| 3 突变体W1的低光合能力缘于其低的光电子接受能力 | 第120页 |
| 4 突变体W1Cab基因的转录水平不是导致其LHCⅡ减少的原因 | 第120-121页 |
| 5 突变体W1的LHCⅡ减少是由于叶绿素合成能力的降低导致 | 第121-122页 |
| 五 参考文献 | 第122-126页 |
| 在读期间发表论文 | 第126-127页 |
| 致谢 | 第127页 |
