| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 第一部分 文献综述 | 第10-25页 |
| 1 水果采后常见的病害种类、病原菌及症状 | 第10-12页 |
| ·疫腐病(Phytophthora de Bary) | 第10页 |
| ·软腐病(Rhizopus Ehrenb. ex. Corda) | 第10页 |
| ·褐腐病(Monilinia Honey) | 第10-11页 |
| ·青霉病(Penicillium Link ex Fr) | 第11页 |
| ·黑腐病(Alternaria Nees ex Wallr.) | 第11页 |
| ·灰霉病(Botrytis Pers. ex. Fr) | 第11-12页 |
| ·酸腐病(Geotrichum Link ex Sau) | 第12页 |
| ·炭疽病(Colletotrichum Corda) | 第12页 |
| 2 控制水果采后病害常用的方法 | 第12-16页 |
| ·低温 | 第13页 |
| ·气调 | 第13页 |
| ·热处理 | 第13-14页 |
| ·电离辐射 | 第14页 |
| ·紫外线 | 第14页 |
| ·臭氧 | 第14页 |
| ·使用杀菌剂控制采后病害 | 第14-15页 |
| ·生物防治控制水果采后病害 | 第15-16页 |
| ·拮抗微生物 | 第15页 |
| ·水果表面存在的天然拮抗菌 | 第15页 |
| ·人工诱导的拮抗菌 | 第15页 |
| ·采后产品抗性的诱导 | 第15-16页 |
| ·利用抗病基因工程技术 | 第16页 |
| ·利用天然植物产物 | 第16页 |
| 3 天然植物产品控制水果采后病害研究进展 | 第16-19页 |
| ·水果体内的抗菌物质 | 第16-17页 |
| ·天然植物提取物 | 第17-18页 |
| ·天然中草药 | 第18-19页 |
| ·中草药单剂 | 第18-19页 |
| ·中草药复合制剂 | 第19页 |
| 3 国内外天然水果防腐保鲜剂的研究动态 | 第19-22页 |
| ·国外天然水果保鲜剂研究动态 | 第19-20页 |
| ·国内天然水果保鲜剂的研究动态 | 第20-22页 |
| 4 研究开发天然水果保鲜剂的前景 | 第22-24页 |
| 引言 | 第24-25页 |
| 第二部分 复配植物提取物的筛选 | 第25-30页 |
| 1 材料与方法 | 第25-26页 |
| ·供试材料 | 第25页 |
| ·供试培养基 | 第25页 |
| ·供试菌种 | 第25页 |
| ·病原菌及孢子悬浮液的制备 | 第25页 |
| ·供试植物提取物 | 第25页 |
| ·方法 | 第25-26页 |
| ·复配植物提取物的定性筛选 | 第25页 |
| ·复配植物提取物的定量筛选 | 第25-26页 |
| ·植物提取物单剂的毒力测定 | 第25-26页 |
| ·增效作用判断标准 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-28页 |
| ·复配植物提取物的定性筛选 | 第26页 |
| ·对M. fructicola有增效作用复配植物提取物的定性筛选 | 第26页 |
| ·对R. stolonifer有增效作用复配植物提取物的定性筛选 | 第26页 |
| ·对P. expansum有增效作用复配植物提取物的定性筛选 | 第26页 |
| ·复配植物提取物的定量筛选 | 第26-28页 |
| ·对M. fructicola和P. expansum有增效作用复配植物提取物的定量筛选 | 第26-28页 |
| ·植物提取物对两种病菌的抑制中浓度EC_(50) | 第26-27页 |
| ·植物提取物复配增效组合对褐腐和青霉病菌配比的筛选 | 第27-28页 |
| ·对R. stolonifer有增效作用复配植物提取物的定量筛选 | 第28页 |
| 3 结论与讨论 | 第28-30页 |
| ·结论 | 第28页 |
| ·讨论 | 第28-30页 |
| 第三部分 植物提取物复配对采后桃果实致腐真菌的离体抑菌试验 | 第30-39页 |
| 1 材料与方法 | 第30-31页 |
| ·供试材料 | 第30页 |
| ·供试培养基 | 第30页 |
| ·供试菌种 | 第30页 |
| ·病原菌及孢子悬浮液的制备 | 第30页 |
| ·复配植物提取物 | 第30页 |
| ·方法 | 第30-31页 |
| ·复配植物提取物对病原菌菌丝生长的影响 | 第30页 |
| ·复配植物提取物对病原菌孢子(囊)产生的影响 | 第30页 |
| ·复配植物提取物对病原菌孢子(囊)萌发及芽管长度的影响 | 第30-31页 |
| ·最小抑制浓度(MIC)和最小致死浓度(MFC)的测定 | 第31页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC)测定 | 第31页 |
| ·最小致死浓度(MFC)测定 | 第31页 |
| ·菌丝形态学变化 | 第31页 |
| 2 结果与分析 | 第31-37页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对M. fructicola的抑制作用 | 第31-33页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对M. fructicola菌丝生长的影响 | 第31-32页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对M. fructicola孢子产生的影响 | 第32页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对M. fructicola孢子萌发及芽管长度的影响 | 第32-33页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对R. stolonifer的抑制作用 | 第33-34页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对R. stolonifer菌丝生长的影响 | 第33页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对R. stolonifer孢子产生的影响 | 第33-34页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对R. stolonifer孢子萌发及芽管长度的影响 | 第34页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对P. expansum的抑制作用 | 第34-37页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对P. expansum菌丝生长的影响 | 第34-35页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对P. expansum孢子产生的影响 | 第35页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对P. expansum孢子萌发及芽管长度的影响 | 第35-36页 |
| ·最小抑制浓度(MIC)和最小致死浓度(MFC)的测定 | 第36-37页 |
| ·复配植物提取物对病原菌菌体形态的影响 | 第37页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对M. fructicola菌体形态的影响 | 第37页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对R. stolonifer菌体形态的影响 | 第37页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对P. expanaum菌体形态的影响 | 第37页 |
| 3 结论与讨论 | 第37-39页 |
| ·结论 | 第37-38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| 第四部分 复配植物提取物对水果采后致腐真菌的活体抑菌防腐试验 | 第39-46页 |
| 1 材料与方法 | 第39-40页 |
| ·材料 | 第39页 |
| ·桃品种 | 第39页 |
| ·复配植物提取物 | 第39页 |
| ·方法 | 第39-40页 |
| ·植物提取物复配处理液的制备 | 第39页 |
| ·病原菌及孢子悬浮液的制备 | 第39页 |
| ·在果实上的防腐试验 | 第39-40页 |
| ·统计分析 | 第40页 |
| 2 结果与分析 | 第40-44页 |
| ·3号／5号(5：1)复配对采后桃果实M. fructicola引起的褐腐病的防治效果 | 第40-41页 |
| ·2号／5号／12号(1：1：1)复配对采后桃果实R. stolonifer引起的软腐病的防治效果 | 第41-43页 |
| ·3号／5号(1：1)复配对采后桃果实P. expansum引起的青霉病的防治效果 | 第43-44页 |
| 3 结论与讨论 | 第44-46页 |
| ·结论 | 第44-45页 |
| ·讨论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-52页 |
| 英文摘要 | 第52-54页 |
| 附图片 | 第54-56页 |
