| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-17页 |
| 第一章 恒河猴凋亡细胞的制备 | 第17-30页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第17页 |
| ·材料与方法 | 第17-19页 |
| ·实验动物 | 第17页 |
| ·仪器设备与试剂 | 第17-18页 |
| ·实验方法 | 第18-19页 |
| ·淋巴细胞的分离及计数 | 第18页 |
| ·细胞活力检测 | 第18-19页 |
| ·诱导细胞凋亡的方法 | 第19页 |
| ·收集细胞及检测 | 第19页 |
| ·凋亡的判定 | 第19页 |
| ·结果与分析 | 第19-26页 |
| ·分离单个核细胞的数量、纯度和活性 | 第19页 |
| ·不同紫外线照射时间对恒河猴外周血单个核细胞凋亡的影响 | 第19-21页 |
| ·紫外线照射后不同孵育时间对恒河猴外周血单个核细胞凋亡的影响 | 第21-22页 |
| ·紫外线照射不同时间并震荡细胞对不同浓度恒河猴外周血单个核细胞凋亡的影响 | 第22-26页 |
| ·讨论 | 第26-28页 |
| ·运用紫外线照射法诱导恒河猴外周血单个核细胞凋亡的优缺点 | 第26页 |
| ·细胞凋亡的判定 | 第26-27页 |
| ·震荡细胞和孵育时间对凋亡率的影响 | 第27-28页 |
| ·参考文献 | 第28-30页 |
| 第二章 凋亡细胞联合雷帕霉素对恒河猴体内调节性T细胞的影响 | 第30-49页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第30页 |
| ·材料与方法 | 第30-37页 |
| ·实验动物 | 第30-31页 |
| ·仪器设备与试剂 | 第31-33页 |
| ·实验方法 | 第33-37页 |
| ·动物分组 | 第33-34页 |
| ·恒河猴口服给药方法 | 第34页 |
| ·血药浓度的检测 | 第34页 |
| ·大量凋亡细胞制备 | 第34-35页 |
| ·凋亡细胞的检测 | 第35页 |
| ·凋亡细胞的输注 | 第35页 |
| ·CD4~+Foxp3~+调节性T细胞的检测 | 第35-37页 |
| ·结果与分析 | 第37-41页 |
| ·凋亡细胞的检测及计数 | 第37-38页 |
| ·雷帕霉素的血药浓度 | 第38页 |
| ·Treg检测结果 | 第38-41页 |
| ·讨论 | 第41-45页 |
| ·凋亡细胞与Treg的关系 | 第41-42页 |
| ·凋亡细胞诱导恒河猴免疫耐受的策略和问题 | 第42-44页 |
| ·凋亡细胞联合雷帕霉素对恒河猴体内Treg影响的初步分析 | 第44-45页 |
| ·参考文献 | 第45-49页 |
| 第三章 坏死细胞对小鼠体内调节性T细胞的影响 | 第49-60页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第49页 |
| ·材料与方法 | 第49-51页 |
| ·实验动物 | 第49页 |
| ·仪器设备与试剂 | 第49-50页 |
| ·实验方法 | 第50-51页 |
| ·坏死细胞制备与检测 | 第50-51页 |
| ·实验分组 | 第51页 |
| ·CD4~+CD25~+Foxp3~+Treg细胞的检测 | 第51页 |
| ·结果与分析 | 第51-56页 |
| ·各实验组中CD4~+Treg占淋巴细胞的比例 | 第51-53页 |
| ·各实验组中CD4~+T占淋巴细胞的比例 | 第53-54页 |
| ·各实验组中CD4~+Fxop3~+Treg占CD4~+T细胞的比例 | 第54-56页 |
| ·讨论 | 第56-58页 |
| ·坏死细胞对小鼠体内Treg的影响 | 第56-57页 |
| ·H_2O_2对坏死细胞的作用 | 第57-58页 |
| ·参考文献 | 第58-60页 |
| 第四章 文献综述 | 第60-70页 |
| ·Treg的一般生物学特性 | 第60-61页 |
| ·Foxp3与nTreg的关系 | 第61-62页 |
| ·CD4+CD25+Foxp3+Treg的作用机制 | 第62-63页 |
| ·Treg与人类疾病 | 第63-64页 |
| ·Treg与妊娠 | 第64-65页 |
| ·展望 | 第65页 |
| ·参考文献 | 第65-70页 |
| 小结 | 第70-71页 |
| 附录 | 第71-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
